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  <title xml:lang="spa">Lista de chequeo de los Hongos útiles y no útiles de Colombia</title>
      <creator>
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        <givenName>Natalia</givenName>
      <surName>Vargas Estupiñán</surName>
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  <pubDate>
      2024-11-27
  </pubDate>
  <language>eng</language>
  <abstract>
    <para>I2D-BIO_2021_019. Lista de especies que integra información de mil seiscientas veinticuatro (1624) especies de hongos útiles y no útiles de Colombia. Este listado incluye información de 369 especies útiles y 1301 especies no útiles con información sobre distribución, hábitat, ecología, hábito, elevación, endemismo, información taxonómica, depuración de sinonimias y referencias numéricas. Para los hongos útiles se incluye descripción morfológica, tipos y modo de uso, descripción del uso, estructuras usadas y estado de conservación.</para>
  </abstract>
      <keywordSet>
            <keyword>Checklist</keyword>
            <keyword>hongos útiles</keyword>
            <keyword>hongos no útiles</keyword>
            <keyword>Colombia</keyword>
        <keywordThesaurus>GBIF Dataset Type Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_type.xml</keywordThesaurus>
      </keywordSet>
      <keywordSet>
            <keyword>Inventorythematic</keyword>
            <keyword>hongos útiles</keyword>
            <keyword>hongos no útiles</keyword>
            <keyword>Colombia</keyword>
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      </keywordSet>
      <keywordSet>
            <keyword>Checklist</keyword>
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  <intellectualRights>
    <para>La I2D podrá compartir la información a entidades externas e investigadores del IAvH sin ninguna restricción. Licencia <ulink url="http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/legalcode"><citetitle>Libre a nivel interno y externo (Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0)</citetitle></ulink>.</para>
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          <geographicDescription>Lista de especies de hongos útiles y no útiles presentes diferentes departamentos de Colombia. El listado incluye especies nativas y no nativas</geographicDescription>
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                    <calendarDate>2020-05-25</calendarDate>
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                  <calendarDate>2021-01-07</calendarDate>
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          <taxonomicCoverage>
              <generalTaxonomicCoverage>El filo con mayor número de especies registradas es el Basidiomycota (1075 especies) con mayor representatividad de especies en la clase Agaricomycetes (1051), donde se ubican las comúnmente denominadas setas, hongos repisa, boletaceos, gasteromicetes, entre otros. En el orden Agaricales (clase Agaricomycetes) se registró la mayor cantidad de especies (567).

Del filo Ascomycota se registraron 463 especies, en donde la clase Sordariomycetes presenta la mayor cantidad de especies (207). En esta clase se ubican especies de hongos que presentan peritecios (ascocarpos en forma de pera o botella) e incluyen saprótrofos, entomopatógenos, endófitos y patógenos de plantas. 

En el filo Glomeromycota se registraron 96 especies de micorrizas arbusculares y en el filo Mucoromycota 28 especies microscópicas que son generalmente saprótrofas.</generalTaxonomicCoverage>
              <taxonomicClassification>
                  <taxonRankName>phylum</taxonRankName>
                <taxonRankValue>Basidiomycota</taxonRankValue>
                  <commonName>Basidiomicetes</commonName>
              </taxonomicClassification>
              <taxonomicClassification>
                  <taxonRankName>phylum</taxonRankName>
                <taxonRankValue>Ascomycota</taxonRankValue>
                  <commonName>Ascomicetes</commonName>
              </taxonomicClassification>
              <taxonomicClassification>
                  <taxonRankName>phylum</taxonRankName>
                <taxonRankValue>Glomeromycota</taxonRankValue>
                  <commonName>Micorrizas arbuscculares</commonName>
              </taxonomicClassification>
              <taxonomicClassification>
                  <taxonRankName>phylum</taxonRankName>
                <taxonRankValue>Mucoromycota</taxonRankValue>
              </taxonomicClassification>
          </taxonomicCoverage>
  </coverage>
  <purpose>
    <para>Buscar, consolidar y estandarizar información referente a la distribución geográfica, ecología, taxonomía, tipo y modo de uso incluyendo el reporte de usos alimenticios, cosméticos y medicinales , entre otras categorías de uso, de especies de hongos de Colombia.</para>
  </purpose>
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      <para></para>
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    <individualName>
        <givenName>Germán</givenName>
      <surName>Torres Morales</surName>
    </individualName>
    <organizationName>Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt</organizationName>
    <positionName>Investigador</positionName>
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      </contact>
  <methods>
        <methodStep>
          <description>
            <para>Para el desarrollo de las fichas de especies de hongos útiles de Colombia se diligenció un archivo en formato Excel siguiendo una modificación del estándar de información biológica DarwinCore. El estándar fue ajustado inicialmente para incluir nuevas variables y reconciliar los parámetros necesarios para la publicación de la información el portal ColPlantA administrado por RBG Kew y el SiB Colombia. Finalmente, este archivo fue compartido al equipo de Kew y aprobado posteriormente para ser empleado.</para>
          </description>
        </methodStep>
        <methodStep>
          <description>
            <para>El archivo fue diligenciado en inglés e incluyó las siguientes categorías de información: categorías de uso 1, 2a y 2b ó 3, las cuales fueron sistematizada de acuerdo a la versión modificada del Estándar de Botánica Económica de Cook (1995), a partir de un consolidado de dos archivos enviados por el equipo de Kew en abril de 2020. Asimismo, se incluyó información de taxonomía, ecología/hábitat, morfología, distribución geográfica de las especies por países y departamentos, elevación, estructuras de los hongos usados y descripción del uso, dependiendo de la disponibilidad de información; hábito de la especie, origen (tropical, templado, subtropical, introducido, cultivado) y categorías de amenaza global según The Global Fungal Red List Initiative (http://iucn.ekoo.se/en/iucn).</para>
          </description>
        </methodStep>
        <methodStep>
          <description>
            <para>Se incluyó una columna de referencias numéricas para las variables: origen, distribución, elevación, hábitat/ecología, usos tipo 1, 2a, 2b ó 3, descripción morfológica y del uso. En caso de reportarse información proveniente de más de dos fuentes bibliográficas diferentes para los tipos de usos 1, 2a o 2b, las categorías y nivel de uso se separaron por el símbolo barra vertical  (|), correspondientes en el mismo orden a cada referencia numérica separadas  por el símbolo barra vertical (|). De esta manera, en ocasiones se repite un valor de una medida para relacionar la referencia bibliográfica directamente con el valor de esa medida, asegurando que cada dato tenga una referencia asociada.

Con base en lo anterior, se construyeron fichas completas e intermedias. Las primeras incluyeron información de al menos la categoría de uso 1, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica de las especies (localidades, municipios, código DANE de municipios, departamentos, países y elevación), categorías de amenaza global (en caso de haber sido evaluadas), origen (cultivado o nativo), hábito, hábitat/ecología, morfología y las referencias bibliográficas respectivas (en número). En el segundo caso sólo se incluyó información de taxonomía, origen, hábitat/ecología, distribución geográfica de las especies (localidades, municipios, código DANE de municipios, departamentos, países y elevación) y las referencias bibliográficas respectivas La distribución por países en varias especies en las que no se encontró información en literatura, se consultó en el portal de colecciones fúngicas MycoPortal disponible en línea (https://mycoportal.org).</para>
          </description>
        </methodStep>
        <methodStep>
          <description>
            <para>La búsqueda de literatura se hizo utilizando las bases de datos Scopus, Google, ISI web of Knowledge y referencias dentro de artículos sobre listados y reportes de especies fúngicas de Colombia. La literatura sobre la utilidad de las especies de hongos se basó en publicaciones hechas en Colombia y en otros países. Se hizo una revisión de 642 fuentes de información correspondientes a 476 artículos, 58 libros, 46 páginas de internet, 26 capítulos de libro, 25 tesis, 3 folletos, además de manuscritos, monografías, catálogos, coloquios, informes de proyecto y comunicaciones personales. Los datos bibliométricos de las referencias se registraron en un archivo Excel y a su vez mediante el uso del gestor bibliográfico Mendeley, con la asignación de un número para cada referencia y organizadas por temáticas. Estas referencias numéricas están registradas en la sección REFERENCIAS de los Metadatos para la LISTA DE CHEQUEO DE LOS HONGOS ÚTILES Y NO ÚTILES DE COLOMBIA

El esfuerzo de búsqueda de literatura se realizó durante 4 meses para especies útiles de fichas completas y 4 meses para especies organizadas en fichas intermedias, y se revisaron referencias del año 1899 hasta el 2020. La información se registró en formato Excel.</para>
          </description>
        </methodStep>
        <methodStep>
          <description>
            <para>La revisión de taxonomía y sinonimias se siguió de acuerdo a la página web Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/).</para>
          </description>
        </methodStep>
        <methodStep>
          <description>
            <para>Terminología usada para especies útiles: En cuanto a las especies de hongos útiles se usó la siguiente terminología: 1) Útil: especie de hongo presente en Colombia y categorizada de acuerdo al Estándar de Botánica Económica de Kew Gardens, independientemente de que sea usada o no en Colombia; 2) Usada: reportes de especies de hongos usadas por comunidades en Colombia; 3) Uso evaluado: investigación realizada sobre especies de hongos en condiciones de laboratorio o de campo, donde se evalúa su potencial utilidad; y 4) Subutilizado: especie de hongo que está presente en los ecosistemas colombianos, cuyo uso se reporta en otros países, pero no hay reportes que demuestren su uso o evaluación en Colombia.</para>
          </description>
        </methodStep>
      <sampling>
        <studyExtent>
          <description>
            <para>Datos sobre hongos útiles y no útiles presentes en diferentes departamentos de Colombia</para>
          </description>
        </studyExtent>
        <samplingDescription>
          <para>Para el desarrollo de las fichas de especies de hongos útiles de Colombia se diligenció un archivo en formato Excel siguiendo una modificación del estándar de información biológica DarwinCore. El estándar fue ajustado inicialmente para incluir nuevas variables y reconciliar los parámetros necesarios para la publicación de la información el portal ColPlantA administrado por RBG Kew y el SiB Colombia. La búsqueda de literatura se hizo utilizando las bases de datos Scopus, Google, ISI web of Knowledge y referencias dentro de artículos sobre listados y reportes de especies fúngicas de Colombia. La literatura sobre la utilidad de las especies de hongos se basó en publicaciones hechas en Colombia y en otros países. Se hizo una revisión de 642 fuentes de información correspondientes a 476 artículos, 58 libros, 46 páginas de internet, 26 capítulos de libro, 25 tesis, 3 folletos, además de manuscritos, monografías, catálogos, coloquios, informes de proyecto y comunicaciones personales. El archivo fue diligenciado en inglés e incluyó las siguientes categorías de información: categorías de uso 1, 2a y 2b ó 3, las cuales fueron sistematizada de acuerdo a la versión modificada del Estándar de Botánica Económica de Cook (1995), a partir de un consolidado de dos archivos enviados por el equipo de Kew en abril de 2020. Asimismo, se incluyó información de taxonomía, ecología/hábitat, morfología, distribución geográfica de las especies por países y departamentos, elevación, estructuras de los hongos usados y descripción del uso, dependiendo de la disponibilidad de información; hábito de la especie, origen (tropical, templado, subtropical, introducido, cultivado) y categorías de amenaza global según The Global Fungal Red List Initiative (http://iucn.ekoo.se/en/iucn).</para>
        </samplingDescription>
      </sampling>
      <qualityControl>
        <description>
          <para>La revisión de categorías taxonómicas, sinonimias y autoría de nombres científicos se siguió de acuerdo a la página web Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/). El Index Fungorum es un recurso comunitario actualmente coordinado y respaldado por The Royal Botanic Gardens Kew representado por la Sección de Micología, el Landcare Research-NZ, representada por el Grupo de Micología, y el Instituto de Microbiología, Academia China de Ciencias. 
Los municipios de Colombia obtenidos de publicaciones y registros biológicos obtenidos de Mycoportal (https://mycoportal.org), se confirmaron en el Geoportal del DANE usando la codificación Divipola (https://geoportal.dane.gov.co/geovisores/territorio/consulta-divipola-division-politico-administrativa-de-colombia/). Los datos de ecología disponibles para algunas especies se consultaron en la base de datos Funguild (http://www.funguild.org/)</para>
        </description>
      </qualityControl>
  </methods>
  <project >
    <title>Plantas y Hongos Útiles de Colombia</title>
      <personnel>
        <individualName>
            <givenName>Mabel Tatiana</givenName>
          <surName>Rojas Rueda</surName>
        </individualName>
        <role>pointOfContact</role>
      </personnel>
      <funding>
        <para>Proyecto financiado por el Departamento de Negocios, Energía y Estrategia Industrial del Reino Unido (BEIS), a través del Fondo Newton - Caldas y el Ministerio de Ciencia, Tecnología e Innovación (MinCiencias); implementado por el British Council.</para>
      </funding>
      <studyAreaDescription>
        <descriptor name="generic"
                    citableClassificationSystem="false">
          <descriptorValue>Datos sobre hongos útiles y no útiles presentes en diferentes departamentos de Colombia, obtenidos de literatura. El listado incluye hongos nativos y no nativos, así como especies comerciales usadas en Colombia.</descriptorValue>
        </descriptor>
      </studyAreaDescription>
      <designDescription>
        <description>
          <para>El proyecto Plantas y Hongos Útiles de Colombia es una iniciativa liderada por el Real Jardín Botánico de Kew con la colaboración del Instituto de Investigación en Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Su objetivo es desarrollar vías para mejorar la contribución de la naturaleza a la sociedad colombiana mediante el aumento, la consolidación y la accesibilidad del conocimiento sobre plantas y hongos útiles para el beneficio de todos, pero en especial de las comunidades locales. Adicionalmente, busca promover un mercado para especies nativas subutilizadas y sus productos de alto valor. Por último, el proyecto busca motivar el uso sostenible de la biodiversidad a la vez que se protegen los recursos naturales.</para>
        </description>
      </designDescription>
  </project>
</dataset>
  <additionalMetadata>
    <metadata>
      <gbif>
          <dateStamp>2021-03-31T07:46:00.032+00:00</dateStamp>
          <hierarchyLevel>dataset</hierarchyLevel>
            <citation identifier="http://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=le_fungi_colombia_2021">Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2021). Lista de los hongos nativos útiles y no útiles de Colombia. 1624  especies aportadas por: Natalia Vargas Estupiñán (Autora, Creadora del recurso, Proveedora de metadatos), Germán Torres Morales (Contacto del recurso, editor).</citation>
          <bibliography>
                <citation>Cook, F. (1995) Economic Botany Data Collection Standard Prepared for the International Working Group on Taxonomic Databases for Plant Sciences (TDWG). Kew, UK: Royal Botanic Gardens. 146 p.</citation>
                <citation identifier="005">Agudelo, F., Falcon, L. A. (1977) Some naturally occurring insect pathogens in Colombia. Turrialba, 27 (4): 423–424. https://www.cabi.org/ISC/abstract/19780559455</citation>
                <citation identifier="006">Alves, S. B., Pereira, R. M., Lopes, R. B., &amp; Tamai, M. (2002) Use of entomopathogenic fungi in Latin America. Pp. 193–211. En: Upadhyay R (ed). Advances in Microbial Control of Insect Pests. New York, USA: Kluwer Academica/Plenum Publishers.</citation>
                <citation identifier="007">Amaringo-Cortegano, C.A., Vargas-Isla, R., Morais, J.W., Ishikawa, N.K. (2013) Artrópodos Asociados a seis Especies de Hongos Comestibles de Ocurrencia Natural en Manaus, Amazonas, Brasil. Biota Amazônia, 3, 54–63. https://doi.org/10.18561/2179-5746/biotaamazonia.v3n3p54-63</citation>
                <citation identifier="009">Angelini, C., &amp; Medardi, G. (2012). Tropical fungi: twelve species of lignicolous Ascomycota from the Dominican Republic. Mycosphere, 567–601.</citation>
                <citation identifier="011">López, E. L., &amp; Orduz, S. (2002). Metarhizium anisopliae y Trichoderma viride controlan colonias de Atta cephalotes en campo mejor que un insecticida quimico. Revista Colombiana de Biotecnologia, IV(574), 71–78.</citation>
                <citation identifier="012">Arnolds, E. (1995) Conservation and management of natural populations of edible fungi. Canadian Journal of Botany, 73, 987–998</citation>
                <citation identifier="013">Arredondo-Peña, C. A., &amp; Pérez-Martínez, A. M. (2007). Evaluación del crecimiento del hongo Lentinula edodes Berk Pegler en residuos agroindustriales. Tésis de pregrado. Universidad EAFIT. 132 p. Recuperado de: https://repository.eafit.edu.co/bitstream/handle/10784/395/AnaMilena_PerezMartinez_2007.pdf?sequence=1&amp;isAllowed=y</citation>
                <citation identifier="014">Aslan, A., Güllüce, M., Sökmen, M., Adigüzel, A., Sahin, F., &amp; Özkan, H. (2006). Antioxidant and antimicrobial properties of the lichens Cladonia foliacea, Dermatocarpon miniatum, Everinia divaricata, Evernia prunastri, and Neofuscella pulla. Pharmaceutical Biology, 44(4), 247–252. https://doi.org/10.1080/13880200600713808</citation>
                <citation identifier="015">Azeem, U., Dhingra, G. S., &amp; Shri, R. (2018). Pharmacological potential of wood inhabiting fungi of genus Phellinus Quél.: An overview. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 7(2), 1161–1171. http://www.phytojournal.com/archives/2018/vol7issue2/PartQ/7-1-493-195.pdf</citation>
                <citation identifier="019">Baroni, T. J., Franco-Molano, A. E., Lodge, D. J., Lindner, D. L., Horak, E., &amp; Hofstetter, V. (2007). Arthromyces and Blastosporella, two new genera of conidia-producing lyophylloid agarics (Agaricales, Basidiomycota) from the neotropics. Mycological Research, 111(5), 572–580.</citation>
                <citation identifier="020">Barroetaveña, C., &amp; Toledo, C. V. (2016). Hongos silvestres comestibles novedosos en el bosque nativo y en las plantaciones de Patagonia Andina, Argentina. Ciencia e Investigación Forestal INFOR, 22(3), 73–88.</citation>
                <citation identifier="021">Bautista-Gonzalez, J.A., Moreno-Fuentes, A. (2014). Los hongos medicinales de México. Pp: 145–176. En: Moreno-Fuentes A, Garibay-Orijel R (eds). La Etnomicología en México. Estado del Arte-Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (CONACyT). México D. F.: Universidad Autonoma del Estado de Hidalgo- Instituto de Biología (UNAM)-Sociedad Mexicana de Micología-Asociación Etnobiológica Mexicana-Grupo Interdisciplinario para el desarrollo de la Etnomicología en México-Sociedad Latinoamericana de Etnobiología.</citation>
                <citation identifier="022">Bautista-Hernández, S., Herrera, T., Aguirre-Acosta, E., &amp; Esqueda, M. (2011). Contribution to the taxonomy of Bovista in Mexico. Mycotaxon, 118, 27–46.</citation>
                <citation identifier="023">Bautista-Navas, E. &amp; Moreno-Fuentes, A. (2009). Primer registro de Calostoma cinnabarina (Sclerodermatales) como especie comestible. Revista Mexicana de Biodiversidad, 80, 561–564.</citation>
                <citation identifier="025">Beltrán-Alzate, C., Gutiérrez, A. I., &amp;  Saldarriaga, Y. (2008). Patogenicidad de Lecanicillium lecanii (Fungi) sobre la garrapata Boophilus microplus (Acari: Ixodidae) en laboratorio. Revista Colombiana de Entomologia, 34(1), 90–97.</citation>
                <citation identifier="027">Betancur, M., Calderón, H., Betancourt, G., Gallego, A. (2007) Hongos macromycetes en dos relictos de bosque húmedo tropical montano bajo de la vereda la Cuchilla, Marmato, Caldas. ﻿Boletín Científico (Centro de Museos) Museo de Historia Natural, 11, 19–31</citation>
                <citation identifier="028">Boa, E. (2004). Wild edible fungi: A global overview of their use and importance to people. Non-wood forest products 17. Roma, Italia: FAO.  149 p.</citation>
                <citation identifier="029">Boekhout, T. &amp; Pulido, M. (1989). The occurrence of macrofungi and their habitats in vegetations along the Parque Los Nevados transect. En: Van der Hammen, T., Díaz-P. S, Alvarez, V.J. (eds.) La cordillera central colombiana transecto Parque Los Nevados (Segunda. Parte). Berlin, Alemania: J. Cramer; Estudios de Ecosistemas Tropandinos. 3.</citation>
                <citation identifier="031">Bolaños, A. C., Soto Medina, E. (2011) Macrohongos Comestibles y Medicinales Comunes en la Vegetación de la Universidad del Valle, Colombia. Revista de Ciencias, 15, 31–38. https://doi.org/10.25100/rc.v15i0.515</citation>
                <citation identifier="032">Bolívar-Anillo, H. J., Orozco-Sanchez, C., da Silva Lima, G., &amp;  Franco dos Santos, G. (2016) Endophytic Microorganisms Isolated of Plants Grown in Colombia: A Short Review. Journal of Microbial &amp; Biochemical Technology 8: 509-513. https://doi.org/10.4172/1948-5948.1000335</citation>
                <citation identifier="033">Boucias, D., G., Pendland, J., C., &amp; Kalkar, Ö. (2008) Nomuraea. En: Capinera, J.L. (eds) Encyclopedia of Entomology. Dordrecht: Springer,  https://doi.org/10.1007/978-1-4020-6359-6_2235</citation>
                <citation identifier="034">Brasfield, T. W. (1938). The Dacrymycetaceae of Temperate North America. American Midland Naturalist, 20(1), 211-235.</citation>
                <citation identifier="035">Brough, S. G. (1988) Navajo lichen dyes. The Lichenologist, 20(3), 279–290. https://doi.org/10.1017/S0024282988000313</citation>
                <citation identifier="036">Burrola-Aguilar, C., Garibay-Orijel, R., Hernández Téllez, M. (2012) Los hongos comestibles silvestres del estado de México: Propuesta para su aprovechamiento. Pp. 39-49. En: Sánchez, J. &amp; Mata, G. (eds). Hongos comestibles y medicinales en Iberoamerica, investigación y desarrollo en un entorno multicultural. Chiapas, México: Comite Editorial de El Colegio de la Frontera Sur.</citation>
                <citation identifier="037">Büttner, E., Liers, C., Gebauer, M., Collemare, J., Navarro-Muñoz, J. C., Hofrichter, M., Kellner, H. (2019) Draft Genome Sequence of the Wood-Staining Ascomycete Chlorociboria aeruginascens DSM 107184. Microbiology Resoruce Announcements 8 (17), 1–3.</citation>
                <citation identifier="039">Campi, G., Trierveiler-Pereira, L., &amp; Maubet, C. Y. (2017). New records of Phallales from Paraguay. Mycotaxon, 132, 361–372.</citation>
                <citation identifier="041">Castro-Toro, A. M., &amp; Rivillas Osorio, C. A. (2012) Trichoderma spp. Modos de acción, eficacia y usos en el cultivo de café. Manizales, Colombia: FNC- Cenicafé. 31 p.</citation>
                <citation identifier="042">CBS Data Base (2020). CBS Strain Data Base. Recuperado de: http://www.wi.knaw.nl/Collections/Biolomics.aspx?Table=CBS%20strain%20database. Consultado en Mayo de 2020.</citation>
                <citation identifier="043">Cepero de García, M., Restrepo, R.,  Franco-Molano, A.E., Cardenas, M., Vargas, N. (2012) Biología de Hongos. Bogotá, Colombia: Ediciones Uniandes, Universidad de Los Andes. 520 p.</citation>
                <citation identifier="044">Chakraborty, N., Pradhan, P., Duita, A. K., &amp; Acharya, K. (2012). Calvatia cyathiformis: New Record from West Bengal. Science and Culture, 78(3–4), 161–163</citation>
                <citation identifier="045">Chamorro-Martínez, H. A., &amp; Osorio-Navarro, Y. S. (2017). Macrohongos de un fragmento de bosque seco tropical en la localidad de San Antonio, Departamento de Sucre, Colombia. Tésis de pregrado. Universidad de Sucre. 145 p. Recuperado de: https://repositorio.unisucre.edu.co/handle/001/604</citation>
                <citation identifier="046">Chan, W., Heredia, G., Martínez, D., Rodríguez, R. (2014) Enhancement of ligninolytic enzyme activities in a Trametes maxima-Paecilomyces carneus co-culture: Key factors revealed after screening using a Plackett-Burman experimental design. Electronic Journal of Biotechnology, 17(3),114–121. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2014.04.007</citation>
                <citation identifier="047">Chardon, C. (1928) Contribución al estudio de la Flora micológica de Colombia. Boletín de la Sociedad Española de Historia Natural 28 (2), 111–124</citation>
                <citation identifier="048">Chardón, C. E., Toro, R. A. (1930) Mycological explorations of Colombia. Journal of the Department of Agriculture of Porto Rico, 14(4), 195–369</citation>
                <citation identifier="049">Chen, A. J., Hubka, V., Frisvad, J. C., Visagie, C. M., Houbraken, J., Meijer, M., Varga, J., Demirel, R., Jurjević, Ž., Kubátová, A., Sklenář, F., Zhou, Y. G., Samson, R. A. (2017) Polyphasic taxonomy of Aspergillus section Aspergillus (formerly Eurotium ), and its occurrence in indoor environments and food. Studies in Mycology, 88, 37–135. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2017.07.001</citation>
                <citation identifier="050">Chiriví-Salomón, J. S., Danies, G., Restrepo, S., &amp; Sanjuan, T. (2015) Lecanicillium sabanense sp. nov. (Cordycipitaceae) a new fungal entomopathogen of coccids. Phytotaxa 234: 63-74. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.234.1.4</citation>
                <citation identifier="051">Chiriví-Salomón, J., Danies, G., Sierra, R., Schauer, N., Trenkamp, S., Restrepo, S., Sanjuan, T. (2017) Metabolomic profile and nucleoside composition of Cordyceps nidus sp. nov. (Cordycipitaceae): A new source of active compounds. PLOS ONE 12, e0179428. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0179428</citation>
                <citation identifier="053">Cifuentes, J., Petersen, R., &amp; Hughes, K. (2003) Campanophyllum: A new genus for an old species name. Mycological Progress, 2, 285–295</citation>
                <citation identifier="054">CNALH (2020). Consortium of North American Lichen Herbaria. Disponible en: http//:lichenportal.org/cnalh/index.php. Consultado el 3 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="055">Córdoba M, K. A., &amp; Ríos H, A. (2012). Biotechnological applications and potential uses of the mushroom Tramestes versicolor. Vitae, 19(1), 70–76.</citation>
                <citation identifier="056">Corner, E. J. (1953) Addenda Clavariaceae. Annals of Botany, 17, 347–368</citation>
                <citation identifier="060">Dailey, R. N., Montgomery, D. L., Ingram, J. T., Siemion, R., &amp; Raisbeck, M. F. (2008). Experimental reproduction of tumbleweed shield lichen (Xanthoparmelia chlorochroa) poisoning in a domestic sheep model. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 20(6), 760–765. https://doi.org/10.1177/104063870802000607</citation>
                <citation identifier="063">De Bekker, C., Ohm, R. A., Evans, H. C., Brachmann, A., &amp; Hughes, D. P. (2017). Ant-infecting Ophiocordyceps genomes reveal a high diversity of potential behavioral manipulation genes and a possible major role for enterotoxins. Scientific Reports, 7(1), 1–13. https://doi.org/10.1038/s41598-017-12863-w</citation>
                <citation identifier="064">De Kesel, A., Malaisse, F. (2010) Edible Wild Food: Fungi. Pp. 41-56. En: Malaisse F (ed). How to live and survive in Zambezian open forest (Miombo Ecoregion). Gembloux, Bélgica: Les Presses Agronomiques de Gembloux.</citation>
                <citation identifier="065">DeLay, C. (2020) Bearded Lichen (Usnea longissima Ach.). United States Department of Agriculture (USDA). Disponible en: https://www.fs.fed.us/wildflowers/plant-of-the-week/usnea_longissima.shtml Consultado el 3 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="066">Denison, W. C. (1967). Central American Pezizales. II. The Genus Cookeina. Mycologia, 59(2), 306–317.</citation>
                <citation identifier="067">Dennis, R. W. (1970) Fungus Flora of Venezuela and Adjacent Countries. Kew Bulletin Additional Series, III. Royal Botanic Gardens.</citation>
                <citation identifier="068">Deshpande, M. S., Rale, V. B., &amp; Lynch, J. M. (1992). Aureobasidium pullulans in applied microbiology: A status report. Enzyme and Microbial Technology, 14(7), 514–527. https://doi.org/10.1016/0141-0229(92)90122-5</citation>
                <citation identifier="069">Desjardin, D. E. (1989). The Genus Marasmius from the Southern Appalachian Mountains. Tesis de Doctorado. University of Tennessee - Knoxville. Trace: Tennessee Research and Creative Exchange. 836 p.</citation>
                <citation identifier="071">Dias, R., &amp; Cortez, V. (2013). New records of Pluteus (Agaricales) from Paraná State, Brazil. Mycosphere, 4(5), 937–943.</citation>
                <citation identifier="072">DoctorFungus (2020). Aspergillus nidulans. Recuperado de: https://drfungus.org/knowledge-base/aspergillus-nidulans/ Consultado el 12 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="074">Duarte-Trujillo, A. S., Jiménez-Forero, J. A., Pineda-Insuasti, J., González-Trujillo, C. A., &amp; García-Juárez, M. (2020). Extraction of bioactive substances from Pleurotus ostreatus (Pleurotaceae) by dynamic maceration. Acta Biologica Colombiana, 25(1), 61–74. doi:10.15446/abc.v25n1.72409</citation>
                <citation identifier="075">Ellis, M, &amp; Ellis, P. (1990). Fungi without gills (Hymenomycetes and Gasteromycetes). An identifiaction handbook. Bristol, England: Chapman and  Hall. 329 p.</citation>
                <citation identifier="076">Exeter, R. L., Norvell, L., &amp; Cázares, E. (2006). Ramaria of the Pacific Northwest United States. Salem, Oregon: United States Department of Interior Bureau of Land Management.</citation>
                <citation identifier="077">Eyssartier, G., Masson-Deblaize, I., Joly, P. (2011) 1001 Setas. Madrid, España: Servilibro ediciones SA. 264 p.</citation>
                <citation identifier="079">Flores-Villegas, A. L., Cabrera-Bravo, M., Toriello, C., Bucio-Torres, M. I., Salazar-Schettino, P. M., &amp; Córdoba-Aguilar, A. (2016). Survival and immune response of the Chagas vector Meccus pallidipennis (Hemiptera: Reduviidae) against two entomopathogenic fungi, Metarhizium anisopliae and Isaria fumosorosea. Parasites and Vectors, 9(1), 1–12. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1453-1</citation>
                <citation identifier="080">Franco-Molano, A. E., &amp; Uribe-Calle, E. (2000) Hongos Agaricales y Boletales de Colombia. Biota Colombiana 1: 25–43</citation>
                <citation identifier="081">Franco-Molano, A. E., Aldana, R., &amp; Halling, R. (2000) Setas de Colombia. Guía de campo. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquía. 156 p.</citation>
                <citation identifier="082">Franco-Molano, A. E., Vasco-Palacios, A.M., López-Quintero, C.A., &amp; Boekhout, T. (2005) Macrohongos de la región del Medio Caquetá - Colombia: guía de campo. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquia. 211 p.</citation>
                <citation identifier="083">Franco-Molano, A.E., &amp; Benjumea, C. (2017) Evaluación de la producción de Auricularia auricula-judae sobre tres residuos agrícolas del corregimiento de San Antonio de prado. CR-SIB. Recuperado de: https://ipt.biodiversidad.co/cr-sib/resource.do?r=auricularia. Consultado el 15 de junio de 2020</citation>
                <citation identifier="084">Franco-Molano, A.E., Corrales, A., Vasco-Palacios, A. M. (2010) Macrohongos de Colombia II. Listado de especies de los ordenes Agaricales, Boletalles, Cantharelalles y Russulales (Agaricomycetes, Basidiocmycota). Actualidades Biológicas, 32, 89–113</citation>
                <citation identifier="091">García, H. (1974) Flora Medicinal de Colombia, Botánica médica-Tomo primero. Bogotá, Colombia: Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional. 559 p.</citation>
                <citation identifier="092">Garibay-Orijel, R., Caballero, J., Estrada-Torres, A., Cifuentes, J. (2007) Understanding cultural significance, the edible mushrooms case. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine 3(1). Recuperado de: https://ethnobiomed.biomedcentral.com/articles/10.1186/1746-4269-3-4</citation>
                <citation identifier="093">Garibay-Orijel, R., Córdova, J., Cifuentes, J., Valenzuela, R., Estrada-Torres, A., &amp; Kong, A. (2009) Integrating wild mushrooms use into a model of sustainable management for indigenous community forests. Forest Ecology and Management, 258(2): 122–131. https://doi.org/10.1016/j.foreco.2009.03.051</citation>
                <citation identifier="094">Garibay-Orijel, R., Ruan-Soto, F. (2014). Listado de los Hongos silvestres consumidos como alimento tradicional en México. Pp 91-109.  En: Moreno-Fuentes A, Garibay-Orijel R (eds). La Etnomicología en México. Estado del Arte-Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (CONACyT). México D. F.: Universidad Autonoma del Estado de Hidalgo- Instituto de Biología (UNAM)-Sociedad Mexicana de Micología-Asociación Etnobiológica Mexicana-Grupo Interdisciplinario para el desarrollo de la Etnomicología en México-Sociedad Latinoamericana de Etnobiología. México, D.F. 243 p.</citation>
                <citation identifier="096">GBIF (2020). Global Biodiversity Information Facility. Disponible en: https://www.gbif.org/what-is-gbif Consultado el 12 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="097">Gessler, N. N., Egorova, A. S., &amp; Belozerskaya, T. A. (2013). Fungal anthraquinones. Applied Biochemistry and Microbiology, 49(2), 85–99. https://doi.org/10.1134/S000368381302004X</citation>
                <citation identifier="099">Gomes, R. R., Glienke, C., Videira, S., Lombard, L., Groenewald, J. Z., &amp; Crous, P. W. (2013). Diaporthe: a genus of endophytic, saprobic and plant pathogenic fungi. Persoonia, 31, 1–41</citation>
                <citation identifier="100">Gómez-Ramírez, H. (2014). Lecanicillium lecanii (Zare &amp; Gams) Cepa CCB-LE 524 - Control de la “roya del café”. isponible en: https://alicia.concytec.gob.pe/vufind/Record/SENA_cf99af54c9bad79a3d4dbff6f3805bd2 Consultado el 13 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="102">Gottlieb, A. M., &amp; Wright, J. E. (1999). Taxonomy of Ganoderma from southern South America: subgenus Elfvingia. Mycological Research, 103(10), 1289–1298.</citation>
                <citation identifier="104">Guzmán, G. (1994). Algunos aspectos importantes en la ecologia de los hongos (en especial de los macromicetos). Ecología, 3(2), 1–9.</citation>
                <citation identifier="105">Guzmán, G. (2012). New Taxonomical and Ethnomycological observations on Psilocybe s.s. (Fungi, Basidiomycota, Agaricomycetidae, Agaricales, Strophariaceae) from Mexico, Africa and Spain. Acta Botanica Mexicana, 100, 79–106.</citation>
                <citation identifier="106">Guzmán, G., &amp; Perez, A. (1972). Las especies conocidas del género Panaeolus en México. Boletin de la Sociedad Mexicana de Micología, 6, 17–53. Recuperado de: http://scientiafungorum.org.mx/index.php/micologia/article/view/408</citation>
                <citation identifier="107">Guzmán, G., &amp; Varela, L. (1978) Hongos de Colombia. III. Observaciones sobre los hongos, liquenes y mixomicetos de Colombia. Caldasia, 12, 309–338</citation>
                <citation identifier="108">Guzmán, G., Ramírez-Guillén, F., &amp; Torres, M. (2004). The Hallucinogenic Species of Psilocybe (Fr.) P. Kumm. (Agaricomycetideae) in Colombia, Their Indian Use, New Records, and New Species. International Journal of Medicinal Mushrooms, 6(1), 12. https://doi.org/10.1615/intjmedmushr.v6.i1.90</citation>
                <citation identifier="109">Guzmán, G., Torres, M. G., Ramírez-Guillén, F., &amp; Ríos-Hurtado, A. (2004)  Introducción al Conocimiento de los Macromicetos del Chocó, Colombia. Revista Mexicana de Micología, 19, 33–43</citation>
                <citation identifier="111">Hall, I. R., Lyon, T., Yun, W., &amp; Buchanan, P. (2011). A list of putative edible or medicinal ectomycorrhizal mushrooms. Dunedin, Nueva Zelanda: Truffles and Mushrooms, Consulting Ltd. 44 p.</citation>
                <citation identifier="112">Halling, R. E. (1989). Notes on Collybia III. Three Neotropical Species of Subg. Rhodocollybia. Mycologia, 81(6), 870–875. https://doi.org/10.2307/3760105</citation>
                <citation identifier="114">Halling, R. E., &amp; Mueller, G. (2005) Common mushrooms of the Talamanca Mountains, Costa Rica. New York, USA: The New York Botancial Garden Press,. 195 p.</citation>
                <citation identifier="115">Halling, R. E. (1989) A synopsis of Colombian Boletes. Mycotaxon, 34, 93–113</citation>
                <citation identifier="116">Halling, R. E. (1996) Boletaceae (Agaricales): latitudinal biodiversity and biological interactions in Costa Rica and Colombia. Revista Biología Tropical, 44 Suplemento 4: 111–114</citation>
                <citation identifier="117">Hanlin, R. T. (1992). Illustrated Genera of Ascomycetes Vol. I. 3rd Printing. St. Paul, Minnesota, Estados Unidos: APS Press. 263 p.</citation>
                <citation identifier="118">Henao, L.G. (1989) Notas sobre afiloforales colombianos. Caldasia, 16 (76), 1–9</citation>
                <citation identifier="123">Hjortstam, K. &amp; Ryvarden, L. (1997) Corticioid species (Basidiomycotina, Aphyllophorales) from Colombia collected by Leif Ryvarden. Mycotaxon, 64, 229–241.</citation>
                <citation identifier="124">Hjortstam, K. &amp; Ryvarden, L. (2000) Corticioid species (Basidiomycotina, Aphyllophorales) from Colombia II. Mycotaxon, 74, 241–252.</citation>
                <citation identifier="125">Hjortstam, K. &amp; Ryvarden, L. (2001) Corticioid species (Basidiomycotina, 17 Aphyllophorales) from Colombia III. Mycotaxon 79, 189–200.</citation>
                <citation identifier="127">Hjortstam, K. &amp; Ryvarden, L. (2002) Studies in tropical corticioid fungi (Basidiomycotina, Aphyllophorales) Alutaceodontia, Botryodontia, Hyphodontia s.s. and Kneiffiella. Synopsis Fungorum, 15, 7–17.</citation>
                <citation identifier="132">Hjortstam, K. &amp; Ryvarden, L. (2007) Some species of corticioid fungi (Basidiomycotina, Aphyllophorales) from Costa Rica. Synopsis Fungorum, 22, 17–24.</citation>
                <citation identifier="134">Hjortstam, K. &amp; Ryvarden, L. (2007b) Checklist of corticioid fungi (Basidiomycotina) from the tropics, subtropics, and the southern hemisphere. Synopsis Fungorum, 22, 27–146</citation>
                <citation identifier="140">Hjortstam, K., Ryvarden, L. &amp; Iturriaga, T. (2005) Studies in corticioid fungi from Venezuela II (Basidiomycotina, Aphyllophorales). Synopsis Fungorum, 20, 42–78.</citation>
                <citation identifier="142">Hoshino, F., Kajino, T., Sugiyama, H., Asami, O., &amp; Takahashi, H. (2002) Thermally stable and hydrogen peroxide tolerant manganese peroxidase (MnP) from Lenzites betulinus. FEBS Letters, 530(1–3), 249–252. https://doi.org/10.1016/S0014-5793(02)03454-3</citation>
                <citation identifier="143">Houbraken, J., López-Quintero, C. A., Frisvad, J. C., Boekhout, T., Theelen, B., Franco-Molano, A. E., &amp; Samson, R. A. (2011). Penicillium araracuarense sp. nov., Penicillium elleniae sp. nov., Penicillium penarojense sp. nov., Penicillium vanderhammenii sp. nov. and Penicillium wotroi sp. nov., isolated from leaf litter. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 61(6): 1462–1475. https://doi.org/10.1099/ijs.0.025098-0</citation>
                <citation identifier="146">Jaramillo-Ruiz, D., Yepes, L., Hincapié Llanos, G., Velasquez, A., &amp; Vélez A., L. (2011). Desarrollo de productos a partir de la orellana (Pleurotus ostreatus). Investigaciones Aplicadas, 5(2), 82–91.</citation>
                <citation identifier="147">Karun, N.C., &amp; Sridhar, K. R. (2017) Edible wild mushrooms of the Western Ghats: Data on the ethnic knowledge. Data in Brief, 14, 320-328. https://doi.org/10.1016/j.dib.2017.07.067</citation>
                <citation identifier="148">Kemira Agro Oy (1996) Microorganisms for biological control of fungal infections and pests of plants. Recuperado de: https://patents.justia.com/patent/5811090. Consultado el 15 de Mayo 2020</citation>
                <citation identifier="149">Kepler, R.M., Luangsa-ard, J. J., Hywel-Jones, N. L., Quandt, C. A., Sung, G. H., Rehner, S. A., Aime, C., Henkel, T.W., Sanjuan, T., Zare, R., Chen, M., Li, Z., Rossman, A.Y., Spatafora, W., &amp; Shrestha B. (2017) A phylogenetically-based nomenclature for Cordycipitaceae (Hypocreales). IMA FUNGUS 8: 335-353</citation>
                <citation identifier="150">Kerrigan, R. W. (2016). Agaricus of North America. Memoirs of the New York Botanical garden, Volume 114. New York, USA: New York Botanical Garden Press. 573 pp.</citation>
                <citation identifier="151">Kidd, S., Halliday, C., Alexiou, H., &amp; Ellis, D. (2016). Descriptions of medical Fungi, third edition. Adelaida, Australia: Newstyle Printing. 267 p.</citation>
                <citation identifier="153">Kobayasi, Y., &amp; Shimizu, D. (1960). Monographic studies of Cordyceps 1. Group parasitic on Elaphomyces. Bulletin of the National Science Museum Tokyo, 5, 69–85.</citation>
                <citation identifier="155">Kuo, M. (2006). Pseudohydnum gelatinosum. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/pseudohydnum_gelatinosum.html Consultado el 10 de julio de 2020</citation>
                <citation identifier="157">Kuo, M. (2008a) Stereum hirsutum. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/stereum_hirsutum.html Consultado el 17 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="158">Kuo, M. (2008b). Tremella fuciformis. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/tremella_fuciformis.html Consultado el 4 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="159">Kuo, M. (2010). Laccaria trichodermophora. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/laccaria_trichodermophora.html. Consultado el 28 de Julio de 2020</citation>
                <citation identifier="160">Kuo, M. (2012). Leotia lubrica. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/leotia_lubrica.html Consultado el 27 de Julio de 2020</citation>
                <citation identifier="161">Kuo, M. (2013). Gymnopus confluens. Disponible en: http://www.mushroomexpert.com/gymnopus_confluens.html Consultado el 6 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="162">Kuo, M. (2014). Hygrocybe miniata. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/hygrocybe_miniata.html Consultado el 17 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="163">Kuo, M. (2015a) Pluteus cervinus. Recuperado de: the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/pluteus_cervinus.html Consultado el 10 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="164">Kuo, M. (2015b). Chlorociboria aeruginascens. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/chlorociboria_aeruginascens.html Consultado el 3 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="166">Kuo, M. (2017). Pleurotus ostreatus. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/pleurotus_ostreatus.html Consultado el 27 de Julio de 2020</citation>
                <citation identifier="167">Kuo, M. (2018a). Agaricus campestris. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/agaricus_campestris.html. Consultado el 25 de Julio de 2020</citation>
                <citation identifier="168">Kuo, M. (2018b). Ganoderma applanatum. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/ganoderma_applanatum.html Consultado el 5 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="169">Kuo, M. (2018c). Tricholoma caligatum. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/tricholoma_caligatum.html Consultado el 8 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="170">Kuo, M. (2019a). Abortiporus biennis. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/abortiporus_biennis.html. Consultado el 25 de Julio de 2020</citation>
                <citation identifier="171">Kuo, M. (2019b). Ganoderma lobatum. Retrieved from the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/ganoderma_lobatum.html Consultado el 22 de julio de 2020</citation>
                <citation identifier="172">Kuo, M. (2020). Clathrus columnatus. Recuperado de the MushroomExpert.Com Web site: http://www.mushroomexpert.com/clathrus_columnatus.html Consultado el 22 de julio de 2020</citation>
                <citation identifier="173">Kuo, M., &amp; Methven, A. S. (2014) Mushrooms of the Midwest. Urbana, USA: University of Illinois Press. 440 p. Recuperado de: http://search.ebscohost.com.ezproxy.uniandes.edu.co:8080/login.aspx?direct=true&amp;db=nlebk&amp;AN=816582&amp;lang=es&amp;site=ehost-live.  Consultado en Mayo 20 de 2020</citation>
                <citation identifier="174">Landinez-Torres, A., Panelli, S., Picco, A. M., Comandatore, F., Tosi, S., &amp; Capelli, E. (2019) A meta-barcoding analysis of soil mycobiota of the upper Andean Colombian agro-environment. Scientific Reports, 9(1), 1–12. https://doi.org/10.1038/s41598-019-46485-1</citation>
                <citation identifier="175">Largent, D., &amp; Baroni, T. (1988). How to identify Mushrooms to genus VI: The modern genera Keys and descriptions. California, Estados Unidos: Mad River Press, Inc. 280 p.</citation>
                <citation identifier="177">Leyva, J. M., Pérez-Carlón, J. J., González-Aguilar, G. A., Esqueda, M., &amp; Ayala-Zavala, J. F. (2013) Funcionalidad antibacteriana y antioxidante de extractos hidroalcohólicos de Phellinus merrillii. Revista Mexicana de Micología 37: 11–17</citation>
                <citation identifier="179">Lombana-Álvarez, P., Monterroza-Álvarez, J. A., Chamorro-Quiroz, L. F., Franco-Molano, A. E., &amp; Payares-Díaz, I. R. (2016). Nuevos registros de macromicetos para Colombia. Actualidades Biológicas, 38(105), 181–189. https://doi.org/10.17533/udea.acbi.v38n105a05</citation>
                <citation identifier="180">López-Arboleda, A., Ramírez-Castrillón, M., Mambuscay-Mena, L. A., &amp; Osorio-Cadavid, E. (2010). Diversidad de levaduras asociadas a chichas tradicionales de Colombia. Revista Colombiana de Biotecnología, XII(2), 176–186.</citation>
                <citation identifier="181">López-Quintero, C. A., Straatsma, G., Franco-Molano, A. E., &amp; Boekhout, T. (2012). Macrofungal diversity in Colombian Amazon forests varies with regions and regimes of disturbance. Biodiversity and Conservation, 21(9), 2221–2243. https://doi.org/10.1007/s10531-012-0280-8</citation>
                <citation identifier="182">López-Quintero, C., Vasco-Palacios, A., &amp; Franco-Molano, A. E. (2007) Capítulo 3: Macrohongos de un bosque de roble, Quercus humboldtii Bonpl., en la vereda Contrafuerte, municipio de Andes (Colombia).  Pp 21–34. En: Naranjo, G. D. (ed). Reserva Natural Regional Cuchilla Jardín Támesis Antioquia: una mirada a su biodiversidad. Medellín, Colombia: Red de Investigación en Biodiversidad y Conservación –Redbio, Corporación Autónoma Regional del Centro de Antioquía.</citation>
                <citation identifier="183">López-Quintero, C., Vasco-Palacios, A., &amp; Franco-Molano, A. E. (2011) Nuevos Registros de Macromicetes Colombia I. Macromicetes Colectados en Zonas Urbanas de Medellín (Antioquia). Actualidades Biológicas, 33 (95), 261–274.</citation>
                <citation identifier="184">López-Rodríguez, C., Hernández-Corredor, R., Suárez-Franco, C., &amp; Borrero, M. (2008). Evaluación del crecimiento y producción de Pleurotus ostreatus sobre diferentes residuos agroindustriales del departamento de Cundinamarca. Universitas Scientiarum, 13(2), 128–137.</citation>
                <citation identifier="185">Lowy, B. (1952). The Genus Auricularia. Mycologia, 44(5), 656–692.</citation>
                <citation identifier="186">Lowy, B. (1971) Tremellales. Flora Neotropica, Monograph 6. Nueva York, USA: Hafner Publishing Company, Inc. 153 p.</citation>
                <citation identifier="187">Mains, E. B. (1949). Cordyceps bicephala Berk. and C. australis (Speg.) Sacc. Bulletin of the Torrey Botanical Club, 76, 24–30.</citation>
                <citation identifier="188">Maneevun, A., Dodgson, J., &amp; Sanoamuang, N. (2012). Phaeoclavulina and Ramaria (Gomphaceae, Gomphales) from Nam Nao National Park, Thailand. Tropical Natural History(12), 147–164.</citation>
                <citation identifier="193">Martin, G .W. (1944). New or noteworth tropical fungi III. Lloydia, 7(1), 67–80.</citation>
                <citation identifier="194">Mata, M. (1999) Macrohongos de Costa Rica Vol 1. Santo Domingo de Heredia, Costa Rica: Instituto Nacional de Biodiversidad (Inbio). 253 p.</citation>
                <citation identifier="195">Mata, M. (2003). Macrohongos de Costa Rica Vol 1. Segunda edición. Santo Domingo de Heredia, Costa Rica: Editorial Instituto Nacional de Biodiversidad (Inbio) 257 p.</citation>
                <citation identifier="196">Mata, M., Halling, R., &amp; Mueller, G. (2003). Macrohongos de Costa Rica Vol 2. Santo Domingo de Heredia, Costa Rica: Editorial Instituto Nacional de Biodiversidad (Inbio). 240 p.</citation>
                <citation identifier="197">Melgarejo, E. (2014). Dos hongos silvestres comestibles de la localidad de Incachaca, Cochabamba (Yungas de Bolivia). Acta Nova, 6, 1683–0768.</citation>
                <citation identifier="198">Melo, I., Ramos, P., &amp; Frazao, C. M. (2002). First of Inonotus rickii (Basidiomycetes, Hymenochaetacea) in Portugal. Portugaliae Acta Biologica, 20, 265–269.</citation>
                <citation identifier="199">MercadoLibre (2020). Suplemento De Extracto De Hongo Cordyceps Sinensis. Recuperado de: https://listado.mercadolibre.com.co/salud-equipamiento-medico-suplementos-alimenticios/hongo-cordyceps-sinensis consultado el 10 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="200">Miles, L.A., Lopera, C.A., González, S., Cepero de García, M.C., Franco, A.E., &amp; Restrepo, S. (2012). Exploring the biocontrol potential of fungal endophytes from an Andean Colombian Paramo ecosystem. BioControl 57: 697-710. https://doi.org/10.1007/s10526-012-9442-6</citation>
                <citation identifier="202">Montoya F, Arias D, Betancur-Agudelo M (2005) Contribución al conocimiento de los hongos Macromicetos del Resguardo Indígena Nuestra Señora de la Candelaria de la Montaña Riosucio, Caldas. Boletín Científico (Centro de Museos) Museo de Historia Natural, 9, 19–30</citation>
                <citation identifier="203">Montoya-Alvarez, A. F., Hayakawa, H., Minamya, Y., Fukuda, T., López-Quintero, C. A., &amp; Franco-Molano, A. E. (2011). Phylogenetic relationships and review of the species of Auricularia (Fungi: Basidiomycetes) in Colombia. Caldasia, 33(1), 55–66.</citation>
                <citation identifier="204">Montoya-Barreto, S., Restrepo, G., M., &amp; Tabares, L., A. (2009). Rendimientos en el cultivo de los hongos Pleurotus ostreatus y Pleurotus pulmonarius utilizando como sustratos diversos residuos agroindustriales. Revista de Investigaciones, 14, 16–26.</citation>
                <citation identifier="207">Moreno, H. P., Martínez, A. M., &amp; Fujimoto, Y. (2011). Aislamiento e identificación de dos esteroles y un triterpenoide del cuerpo fructífero de Ganoderma lucidum cultivado en Colombia. Vitae, 18(1), 11–15.</citation>
                <citation identifier="208">Motato, K. E., Mejía, A., &amp; León, A. (2006). Evaluación de los residuos agroindustriales de plátano (Musa paradisíaca) y aserrín de abarco (Cariniana piriformes) como sustratos para el cultivo del hongo Pleurotus djamor. Vitae, 24–29.</citation>
                <citation identifier="209">Mueller, G. M. (1996) Distribution and species composition of Laccaria in Tropical and Subtropical America. Revista Biología Tropical, 44, 131–135</citation>
                <citation identifier="212">Murill, W. (1923). Dark-spores Agarics-V Psilocybe. Micologia, XV(1), 1–51.</citation>
                <citation identifier="213">MyCoPortal (2020). Mycology Collections data Portal. Recuperado de: http://mycoportal.org/portal/index.php. Consultado en Mayo- Diciembre 2020.</citation>
                <citation identifier="214">Nadumane, V. K., Venkatachalam, P., &amp; Gajaraj, B. (2016) Aspergillus Applications in Cancer Research. Pp. 243–255. En: Gupta, V. (ed). New and Future Developments in Microbial Biotechnology and Bioengineering. Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-63505-1.00020-8</citation>
                <citation identifier="215">Nevena, M., Jelena, V., &amp; Franić-Mihajlović, D. (1997). A comparative study of Diaporthe/Phomopsis fungi on soybean from two different regions of the world. Mycopathologia, 139(2), 107–113. https://doi.org/10.1023/A:1006849020432</citation>
                <citation identifier="217">Nuterralcolombia (2020). Nuterralcolombia. Recuperado de: https://nuterral.com/. Consultado el 9 de Junio de 2020</citation>
                <citation identifier="219">Ortega-López, I., Valenzuela, R., Gay-González, A. D., Lara-Chávez, M. B., López-Villegas, E. O., &amp; Raymundo, T. (2019). La familia Sarcoscyphaceae (Pezizales, Ascomycota) en México. Acta Botanica Mexicana, 1–36.</citation>
                <citation identifier="220">Ortíz-Moreno, M. L. (2010). Macromicetos en Zona Rural de Villavicencio. Orinoquia, 14(2): 125–132.</citation>
                <citation identifier="222">Osorio-Cadavid, E., Chaves-Lopez, C., Tofalo, R., Paparella, A., Suzzi, G. (2008). Detection and identification of wild yeasts in champús, a fermented colombian maize beverage. Food Microbiology, 25, 771–777</citation>
                <citation identifier="223">Paíno, P. O., Jean, L. D., &amp; Baroni, T. J. (2007). Hongos comestibles de la Republica Dominicana. Guía de campo. Santo Domingo, Republica Dominicana: Centro para el Desarrollo Agropecuario y Forestal. Inc. ICEDAF. 96 p.</citation>
                <citation identifier="224">Palacio-Barrera, A.M., Areiza, D., Zapata, P., Atehortúa, L., Correa, C., Peñuela-Vásquez, M. (2019) Induction of pigment production through media composition, abiotic and biotic factors in two filamentous fungi. Biotechnology Reports 21, e00308. https://doi.org/10.1016/j.btre.2019.e00308</citation>
                <citation identifier="225">Palacio, M., Gutiérrez, Y., Franco-Molano, A.E., &amp; Callejas-Posada, R. (2014) Nuevos registros de macrohongos (Basidiomycota) para Colombia procedentes de un bosque seco tropical. Actualidades Biológicas, 37 (102), 319–339</citation>
                <citation identifier="226">Pandey, R. K., Tewari, S., Tewari, L. (2018) Lignolytic mushroom Lenzites elegans WDP2: Laccase production, characterization, and bioremediation of synthetic dyes. Ecotoxicology and Environmental Safety, 158, 50–58. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2018.04.003</citation>
                <citation identifier="229">Pegler, D. N. (1983). Agaric flora of the Lesser Antilles. Kew bulletin additional series IX. Royal Botanic Gardens, Kew. 668 p.</citation>
                <citation identifier="230">Peintner, U., Ladurner, H., &amp; Simonini, G. (2003). Xerocomus cisalpinus sp. nov., and the delimitation of species in the X. chrysenteron complex based on morphology and rDNA-LSU sequences. Mycological Research, 107(6), 659–679.</citation>
                <citation identifier="231">Peña-Cañón, E. R., &amp; Henao-Mejía, L. G. (2014) Conocimiento y uso tradicional de hongos silvestres de las comunidades campesinas asociadas a bosques de roble (Quercus humboldtii) en la zona de influencia de la Laguna de Fúquene, Andes Nororientales. Etnobiología, 12, 28–40</citation>
                <citation identifier="233">Peña-Venegas, C. P., Cardona, G. I., Mazorra, A., Arguellez, J. H., Arcos, A. L. (2006). Micorrizas arbusculares de la Amazonia Colombiana. Catalogo Ilustrado. Leticia, Colombia: Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas SINCHI. 90 p.</citation>
                <citation identifier="235">Pérez-Moreno, J., Lorenzana Fernández, A., Carrasco Hernández, V., Yescas-Pérez, A. (2010) Los hongos comestibles silvestres del Parque Nacional Izta-Popo, Zoquiapan y Anexos. Texcoco, México: Colegio de Postgraduados, SEMARNAT, CONACyT. 167 p.</citation>
                <citation identifier="237">Petersen, R. H., &amp; Mueller, G. M. (1992) New South American taxa of Cantharellus, C. nothofagorum, C. xanthoscyphus, and C. lateritius var. colombianus. Boletin de la Sociedad Argentina de Botánica, 28, 195–200</citation>
                <citation identifier="238">Petersen, R. H., Desjardin, D. E., &amp; Krüger, D. (2008). Three type specimens designated in Oudemansiella. Fungal Diversity, 32, 81–96.</citation>
                <citation identifier="239">Morales, L. T., González-García, L. N., Orozco, M. C., Restrepo, S., &amp; Vives, M. J. (2017). The genomic study of an environmental isolate of Scedosporium apiospermum shows its metabolic potential to degrade hydrocarbons. Standards in Genomic Sciences, 12(1), 1–12. https://doi.org/10.1186/s40793-017-0287-6</citation>
                <citation identifier="240">Phillips, R. (2005) Mushrooms and other fungi of North America. Buffalo, Nueva York: Firefly Books. 319 p.</citation>
                <citation identifier="241">Phosri, C., Martín, M. P., &amp; Watling, R. (2013). Astraeus: hidden dimensions. IMA FUNGUS, 4(2), 347–356.</citation>
                <citation identifier="243">Polese, J. M., Lamaison, J. L. (1999) The Great Encyclopedia of Mushrooms. Colonia, Germania: Könemann Verlagsgesellschaft. 240 p.</citation>
                <citation identifier="245">Prance, G. T. (1984). The Use of Edible Fungi by Amazonian Indians. Advances in Economic Botany, 1, 127–139</citation>
                <citation identifier="247">Pulido, M. (1983) Estudios en Agaricales Colombianos: Los hongos de Colombia IX. Bogotá, Colombia: Instituto de Ciencias Naturales, Museo de Historia Natural, Universidad Nacional de Colombia. 143 p.</citation>
                <citation identifier="248">Pulido, M., &amp; Boekhout, T. (1989) Distribution of Macrofungi Along the Parque Los Nevados Transect. Pp 485-505. En: Van der Hammen, T., Díaz Piedrahita, S., &amp; Alvarez, V. (eds). La cordillera central Colombiana Transecto Parque Los Nevados. Studies on Tropical Andean Ecosystems, Vol 3.</citation>
                <citation identifier="249">Quiroga, A. Y., &amp; Supelano, G. W. (2019). Aporte a la diversidad de macrohongos (Ascomycetes y Basidiomycetes) presentes en el sendero ecológico de la quebrada las Delicias. (Chapinero, Bogotá D.C). Tesis de grado, Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Facultad de Ciencas y Educación, Bogotá D.C. 142 p.</citation>
                <citation identifier="254">Reid, D. A. (1958). The Genus Cymatoderma Jungh. (Cladoderris). Kew Bulletin, 13(3), 518–530.</citation>
                <citation identifier="255">Rincón-Espitia, A., &amp; Mateus, N. (2013). Caracterización morfológica y anatómica del género Stereocaulon Hoffmann (Ascomycetes-liquenizados) en Colombia. Caldasia, 35(2 ), 241–260.</citation>
                <citation identifier="257">Robert, V., Stegehuis, G., &amp; Stalpers, J. (2005). The MycoBank engine and related databases. http://www.mycobank.org Consultado el 5 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="258">Rodríguez-Sanabria, N. (2017). Guía ilustrada de hongos que crecen cerca de Bogotá. Página web, recuperada de: https://cartelurbano.com/historias/guia-ilustrada-de-hongos-que-crecen-cerca-de-bogota. Consultado el 5 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="259">Rodríguez-Valencia, N. R, &amp; Jaramillo, C. (2004). Cultivo de hongos comestibles del género Pleurotus sobre residuos agrícolas de la zona cafetera. Cenicafe, 7. 1–61.</citation>
                <citation identifier="260">Rodríguez-Valencia, N. R., &amp; Zuluaga-Vasco, J. Z. (1994). Cultivo de Pleurotus pulmonarius (Fr.) Quél. en pulpa de café. Cenicafé (Colombia) 45 (3), 81–92. http://biblioteca.cenicafe.org/bitstream/10778/697/1/arc045%2803%2981-92.pdf</citation>
                <citation identifier="264">Ruiz, A., &amp; Henao, L. G. (2006). Hongos comestibles de Iguaque, Serie Especies Colombianas: 14. Bogotá, Colombia: Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 8 p.</citation>
                <citation identifier="265">Ruiz, A., &amp; Varela, A. (2006). Nuevos Registros de Aphyllophorales (Basidiomicota) en Bosque Montano Húmedo y de Niebla De Colombia. Caldasia, 28(2), 259–266.</citation>
                <citation identifier="266">Ryvarden, L. (2004). Neotropical polypores Part 1, Introduction, Ganodermataceae &amp; Hymenochaetaceae. Synopsis Fungorum 19, 1–238.</citation>
                <citation identifier="267">Ryvarden, L. (2007) Gymnopilus epileatum nov. species (Cortinariaceae, Agaricales). Synopsis Fungorum, 22, 14–16</citation>
                <citation identifier="268">Ryvarden, L. (2010) Stereoid fungi of America. Synopsis Fungorum, 28, 1– 207.</citation>
                <citation identifier="273">Saldarriaga, Y., Pineda, F., García, G., Velásquez, L., &amp; Guzmán, G. (1988). Nuevos Registros de Agaricales en Colombia. Revista Mexicana de Micología, 4, 333–342</citation>
                <citation identifier="274">Samson, R. A., Hoekstra, E.S., Frisvad, J.C. (2004). Introduction to food- and airborne fungi. Seventh edition. Utrecht, The Netherlands: Centraalbureau voor Schimmelcultures. 389 p.</citation>
                <citation identifier="275">Samuels, G., &amp; Dumont K. P. (1982). The genus Nectria (Hypocreaceae) in Panama. Caldasia, 13 (63), 379–423.</citation>
                <citation identifier="276">Samuels, G., Lieckfeldt, E., &amp; Nirenberg, H. (1999). Trichoderma asperellum, a new species with warted conidia, and redescription of T. viride. Sydowia, 51(1), 71–88</citation>
                <citation identifier="277">Sánchez- Palacios, A. (2015). Producción de hongos comestibles del género Pleurotus a partir de los residuos vegetales provenientes de la plaza de mercado del municipio de Quibdó. Tésis Maestría. Facultad de Ciencias Contables Económicas y Administrativas. Universidad de Manizales. 105 p. Recuperado de: http://ridum.umanizales.edu.co:8080/xmlui/bitstream/handle/6789/2204/Tesis%20Annerys%20-%2026%20de%20mayo%20de%202015%20(1).pdf?sequence=3</citation>
                <citation identifier="279">Sánchez, N. (2006) Hongos Basidiomycetes: una contribución al conocimiento de 14 géneros en Norte de Santander. Respuestas, 2, 14–26</citation>
                <citation identifier="280">Sanjuan, T. I., Franco-Molano, A. E., Kepler, R. M., Spatafora, J. W., Tabima, J., Vasco-Palacios, A. M., &amp; Restrepo, S. (2015). Five new species of entomopathogenic fungi from the Amazon and evolution of neotropical Ophiocordyceps. Fungal Biology, 119(10), 901–916. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2015.06.010</citation>
                <citation identifier="282">Sanjuan, T., Tabima, J., Restrepo, S., Laessoe, T., Spatafora, J. W., &amp; Franco-Molano, A. E. (2014). Entomopathogens of Amazonian stick insects and locusts are members of the Beauveria species complex (Cordyceps sensu stricto). Mycologia, 106(2): 260–275. https://doi.org/10.3852/106.2.260</citation>
                <citation identifier="283">Schenck, N. C., Spain, J. L., Sieverding, E., &amp; Howeler, R. H. (1984). Several New and Unreported Vesicular-Arbuscular Mycorrhizal Fungi (Endogonaceae) from Colombia. Mycologia, 76(4), 685. https://doi.org/10.2307/3793226</citation>
                <citation identifier="284">Schubert, K., Greslebin, A., Groenewald, J. Z., &amp; Crous, P. W. (2009). New foliicolous species of Cladosporium from South America. Persoonia, 22, 111–122. https://doi.org/10.3767/003158509X449381</citation>
                <citation identifier="285">Schumann, G. L., &amp; Uppala, S. (2000). Ergot of rye. The Plant Health Instructor. The American Phytopathological Society. Recuperado de: https://www.apsnet.org/edcenter/disandpath/fungalasco/pdlessons/Pages/Ergot.aspx. DOI: 10.1094/PHI-I-2000-1016-01 Consultado el 11 de Agosto 2020</citation>
                <citation identifier="289">Séry, D. J. M., Kouadjo, Z. G. C., Voko, B. R. R., &amp; Zézé, A. (2016). Selecting native arbuscular mycorrhizal fungi to promote cassava growth and increase yield under field conditions. Frontiers in Microbiology, 7: 1–13. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.02063</citation>
                <citation identifier="290">Setliff, E.C., Ryvarden, L. (1983) Los hongos de Colombia VII: some aphyllophoraceous wood-inhabiting fungi. Mycotaxon, 18, 509–525.</citation>
                <citation identifier="291">Shang, Y. L., Chen, L. L., Zhang, Z. H., &amp; Lu, J. (2012) A comparative study on the fungal communities of wheat Qu for Qingshuang-type Chinese rice wine. Journal of the Institute of Brewing, 118(2): 243–248. https://doi.org/10.1002/jib.28</citation>
                <citation identifier="294">Shukla, P., Upreti, D. K., Nayaka, S., &amp; Tiwari, P. (2014) Natural dyes from Himalayan lichens. Indian Journal of Traditional Knowledge, 13(1), 195–201.</citation>
                <citation identifier="295">Sierra, J. D., Arias, J., &amp; Sánchez, M. (2011) Registro Preliminar de Macrohongos (Ascomycetes y Basidiomycetes) en el Bosque Húmedo Montano del Alto El Romeral (Municipio de Angelópolis, Departamento de Antioquia-Colombia). Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 64, 6159–6174</citation>
                <citation identifier="296">Sieverding, E., &amp; Toro, T. S. (1987). Acaulospora denticulata sp. nov. and Acaulospora rehmii sp. nov. (Endogonaceae) with ornamented spore walls. Angewandte Botanik, 61, 217–223.</citation>
                <citation identifier="297">Silva-Filho, A. G., Seger, C., &amp; Cortez, V. G. (2019). Panaeolus (agaricales) from western Paraná State, South Brazil, with a description of a new species, Panaeolus sylvaticus. Edinburgh Journal of Botany, 1–13.</citation>
                <citation identifier="298">Silva, D. M., Batista, L. R., Rezende, E. F., Fungaro, M. H. P., Sartori, D., &amp; Alves, E. (2011). Identification of fungi of the genus Aspergillus section nigri using polyphasic taxonomy. Brazilian Journal of Microbiology, 42(2), 761–773. https://doi.org/10.1590/S1517-83822011000200044</citation>
                <citation identifier="299">Silva, F. S., De Sá, M. S., Costa, J. F., Pinto, F. P., Lima, M. S., Lucchese, A. M., Góes-Neto, A., Zalis, M. G., Ribeiro-Dos-Santos, R., &amp; Soares, M. B. (2009) In vitro pharmacological screening of macrofungi extracts from the Brazilian northeastern region. Pharmaceutical Biology, 47(5): 384-389. https://doi.org/10.1080/13880200902755226</citation>
                <citation identifier="300">Silveira Ruegger, M. J., Tornisielo, S. M. T., Bononi, V. L. R., &amp; Capelari, M. (2001). Cultivation of the edible mushroom Oudemansiella canarii (Jungh.) Höhn. in lignocellulosic substrates. Brazilian Journal of Microbiology, 32(3), 211–214. https://doi.org/10.1590/S1517-83822001000300009</citation>
                <citation identifier="302">Singer, R. (1963) Oak mycorrhiza fungi in Colombia. Mycopathologia, 20: 239–252</citation>
                <citation identifier="303">Singer, R. (1970) Strobilomycetaceae (Basidiomycetes). Flora Neotropica, Monograph 5. Nueva York, USA: Hafner Publishing Company, Inc. 34 p.</citation>
                <citation identifier="304">Singer, R. (1986) The Agaricales in modern taxonomy, 4th edition. Koenigstein, Alemania: Koeltz Scientific Books. 993 p.</citation>
                <citation identifier="305">Singh, S. (2016) Aspergillus Enzymes for Textile Industry. Pp. 191–198. En: Gupta, V. (ed). New and Future Developments in Microbial Biotechnology and Bioengineering. Elsevier https://doi.org/10.1016/B978-0-444-63505-1.00014-2</citation>
                <citation identifier="306">Sistema Nacional Argentino de Vigilancia y Monitoreo de plagas (2020). Phellinus rimosus. Disponible en: https://www.sinavimo.gov.ar Consultado el 1 Agosto 2020</citation>
                <citation identifier="307">Sitta, N., &amp; Davoli, P. (2012) Edible Ectomycorrhizal Mushrooms: International Markets and Regulations.  Pp. 355–380. En: Zambonelli, A., &amp; Bonito, G. (eds). Edible Ectomycorrhizal Mushrooms, Current Knowledge and Future Prospects. Berlin, Germany: Springer-Verlag.</citation>
                <citation identifier="308">Smith, A. (1964) The mushroom hunter’s field guide, revised and enlarged. Ann Arbor, USA: The University of Michigan Press. 264 p.</citation>
                <citation identifier="309">Smith, C.W., Aptroot, A., Coppins, B.J., Fletcher, A., Gilbert, O.L., James, P.W., &amp; Wolseley, P.A. (eds.) (2009). The lichens of Great Britain and Ireland. London, England: British Lichen Society</citation>
                <citation identifier="319">Sun, J., Liu, X., Mckenzie, E. H., Jeewon, R., Qi, X. Z., &amp; Kevin, Z. (2019) Fungicolous fungi: terminology, diversity, distribution, evolution, and species checklist. Fungal Diversity, 95 (1), 337–430. https://doi.org/10.1007/s13225-019-00422-9</citation>
                <citation identifier="320">Sun, S., Zhang, X., Chen, W., Zhang, L., Zhu, H. (2016) Production of natural edible melanin by Auricularia auricula and its physicochemical properties. Food Chemistry, 196, 486–492. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.09.069</citation>
                <citation identifier="323">Téllez-Téllez, M., Villegas, E., Rodríguez, A., Acosta-Urdapilleta, M., O. A., &amp; Díaz-Godínez, G. (2016). Mycosphere Essay 11: Fungi of Pycnoporus: morphological and molecular identification, worldwide distribution and biotechnological potential. Mycosphere, 7(10), 1500–1525.</citation>
                <citation identifier="324">The Global Fungal Red List Initiative (2020). Disponible en: http://iucn.ekoo.se/en/iucn/welcome. Consultado en Agosto 2020</citation>
                <citation identifier="325">Tobón, L. E. (1991) Ascomycetes de Colombia: Discomicetes del departamento de Antioquia. Caldasia, 16 (78): 327–336</citation>
                <citation identifier="327">Ţura, D., Zmitrovich, I. V., Wasser, S. P., &amp; Nevo, E. (2008). The genus Stereum in Israel. Mycotaxon, 106, 109–126</citation>
                <citation identifier="328">Valenzuela, R., Raymundo, T., &amp; Cifuentes, J. (2013). El género Inonotus s.l. (Hymenochaetales: Agaricomycetes) en México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 84, 1–37</citation>
                <citation identifier="330">Valverde, M. E., Hernández-Pérez, T., &amp; Paredes-López, O. (2015) Edible Mushrooms: Improving Human Health and Promoting Quality Life. International Journal of Microbiology, 2015, 1–14. https://doi.org/10.1155/2015/376387</citation>
                <citation identifier="331">Vanegas Córdoba, I., Yepes Pérez, M., &amp; Ruiz Villadiego, O. (2004). Producción de xilitol a partir de levaduras nativas colombianas. Revista Colombiana de Biotecnología, 6(2), 31–36.</citation>
                <citation identifier="332">Varga, J., Frisvad, J. C., Samson, R. A. (2011) Aflatoxin producing species, and an overview of Aspergillus section Flavi. Studies in Mycology, 69 (1), 57–80. doi:10.3114/sim.2011.69.05</citation>
                <citation identifier="334">Vargas, N., &amp; Restrepo, S. (2019) Macrohongos (Basidiomycota y Ascomycota) de los ecosistemas exocársticos de El Peñón (Andes), Santander, Colombia. Pp. 315-353. En: Lasso CA, Barriga J y Fernánde-Auderset J (Eds.). Biodiversidad subterránea y epigea de los sistemas cársticos de El Peñón (Andes), Santander, Colombia; VII Serie Fauna Silvestre Neotropical. Bogotá, Colombia: Instituto de Investigación de recursos Biológicos Alexander von Humboldt.</citation>
                <citation identifier="335">Vargas, N., &amp; Restrepo, S. (2020) A checklist of Ectomycorrhizal Mushrooms associated to Quercus humboldtii in Colombia. Pp. 425-450. En: Guerin-Laguette, A., Moreno, J., Flores, R., &amp; Quiang, F. (eds). Mushrooms, humans and nature in a changing world: Perspectives from ecological, agricultural and social sciences. Suiza AG: Springer Nature.</citation>
                <citation identifier="336">Vargas, N., Duncritts, N., Barak, Y., Restrepo, S., &amp; Pringle, A. (unpublished) Microbiome transplants: a simpe method to enable urban forestry. En preparación</citation>
                <citation identifier="337">Vargas, N., Gutiérrez, C., Restrepo, S., &amp; Velasco, N. (2019). Oyster mushrooms cultivation as an economic and nutritive alternative for rural low-income women in Villapinzón-Colombia. Pp 561-587. En: Smith A. (ed). Women in Industrial and Systems Engineering: Key Advances and Perspectives on Emerging Topics. Cham, Switzerland AG: Springer Nature. 609 p.</citation>
                <citation identifier="338">Vargas, N., Pardo de la Hoz, C., Franco-Molano, A.E., Jiménez, P., Restrepo, S., &amp; Grajales, A. (2017) Defining the phylogenetic position of Amanita species in Colombia. Mycologia, 109, 261–276</citation>
                <citation identifier="339">Vasco-Palacios, A. M (2002). Estudio etnobiológico de los hongos macromicetes entre los Uitoto de la region de Araracuara (Amazonía Colombiana). Tesis de Pregrado. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. 199 p.</citation>
                <citation identifier="340">Vasco-Palacios, A. M., &amp; Franco-Molano, A. E. (2005). A new species of Gloeocantharellus (Fungi-Basidiomycetes) from Colombian Amazonia. Mycotaxon, 91, 87–92.</citation>
                <citation identifier="341">Vasco-Palacios, A. M., &amp; Franco-Molano, A. E. (2013) Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota - Basidiomycota). Mycotaxon 121: 1-58. http://mycotaxon.com/resources/checklists/VascoPalacios-v121-checklist.pdf</citation>
                <citation identifier="342">Vasco-Palacios, A. M., Franco-Molano, A. E., López-Quintero, C.A., &amp; Boekhout, T. (2005) Macromicetes (Ascomycota, Basidiomycota) de la región del medio Caquetá, departamentos de Caquetá y Amazonas (Colombia). Biota Colombiana, 14, 127–140.</citation>
                <citation identifier="343">Vasco-Palacios, A. M., Suaza, S. C., Castaño-Betancur, M., &amp; Franco-Molano, A. E. (2008). Conocimiento etnoecólogico de los hongos entre los indígenas Uitoto, Muinane y Andoke de la Amazonía Colombiana. Acta Amazonica, 38(1), 17–28. https://doi.org/10.1590/S0044-59672008000100004</citation>
                <citation identifier="346">Velásquez, L. F., Saldarriaga, Y., Pineda, F., García, G. (1989) Nuevos registros de hongos en Colombia (departamento de Antioquia) descripción de algunos Agaricales. Actualidades Biológicas, 18, 74–94.</citation>
                <citation identifier="347">Verkley, G. J. M., Dukik, K., Renfurm, R., Göker, M., &amp; Stielow, J. B. (2014). Novel genera and species of coniothyrium-like fungi in Montagnulaceae (Ascomycota). Persoonia: Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 32, 25–51. https://doi.org/10.3767/003158514X679191</citation>
                <citation identifier="349">Villalobos, S., Mengual, M., &amp; Henao-Mejia, L. G. (2017) Uso de los Hongos, Podaxis pistillaris, Inonotus rickii y Phellorinia herculeana (Basidiomycetes), por la Etnia Wayuu en la Alta Guajira Colombiana. Revista Etnobiologia, 15 (1): 64–73</citation>
                <citation identifier="350">Villegas-Escobar, V., Pérez, A., &amp; Arredondo, C. (2007). Evaluación de la producción del hongo Lentinula edodes Pegler en bloques sintéticos a base de residuos agroindustriales. Ingeniería y Ciencia, 6, 23–40.</citation>
                <citation identifier="352">Waksman, S., &amp; Bugie E. (1944) Chaetomin, a new antibiotic substance produced by Chaetomium cochliodes. Journal of Bacteriology, 48, 527–530.</citation>
                <citation identifier="353">Wang, M., Liu, F., Crous, P. W., &amp; Cai, L. (2017). Phylogenetic reassessment of Nigrospora: Ubiquitous endophytes, plant and human pathogens. Persoonia: Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 39, 118–142. https://doi.org/10.3767/persoonia.2017.39.06.</citation>
                <citation identifier="354">Wang, X. W., Houbraken, J., Groenewald, J. Z., Meijer, M., Andersen, B., Nielsen, K. F., Crous, P. W., &amp; Samson, R. A. (2016). Diversity and taxonomy of Chaetomium and chaetomium-like fungi from indoor environments. Studies in Mycology, 145–224</citation>
                <citation identifier="355">Wang, X. Y., Joshi, Y., &amp; Hur, J. S. (2011). The genus Cladonia (lichenized Ascomycota, Cladoniaceae) in South Korea. Mycotaxon, 117, 405–422. https://doi.org/10.5248/117.405</citation>
                <citation identifier="356">Welden, A. (1969). The Genus Cymatoderma (Thelephoraceae) in the Americans. Mycologia, 52(6), 857–859</citation>
                <citation identifier="358">Westberg, M., &amp; Sohrabi, M. (2012). A conspectus of the lichen genus Candelariella (Candelariaceae, Ascomycota) in Southwest Asia with emphasis on Iran. Nova Hedwigia, 95(3–4), 531–546. https://doi.org/10.1127/0029-5035/2012/0060</citation>
                <citation identifier="360">Winkler, D., &amp; Evans, L. (2014) A field guide to Tropical Amazon mushrooms. China: Mushroaming Publishing. 16 p.</citation>
                <citation identifier="361">Wu, F., Ren, G. J., Wang, L., Oliveira-Filho, J. R. C., Gibertoni, T. B., &amp; Dai, Y. C. (2019). An updated phylogeny and diversity of Phylloporia (Hymenochaetales): eight new species and keys to species of the genus. Mycological Progress, 18(5), 615–639. https://doi.org/10.1007/s11557-019-01476-4</citation>
                <citation identifier="362">Wu, Q., &amp; Mueller, G. (1995) The genus Craterellus (Basidiomycetes, Aphyllophorales) in Costa Rica and Colombia. Documents Mycologiques, XXV, 487–496</citation>
                <citation identifier="363">Wu, Q., Mueller, G., &amp; Obrevo, C. (1997) An index to genera, species, and infraspecfic taxa of Basidiomycete Fungi described by Rolf Singer. Pp. 13–99. En: Mueller, G., &amp; Wu, Q. (eds). Mycological contributions of Rolf Singer: Field itinerary, index to new taxa, and list of publications. Fieldiana, Botany. Chicago, USA: Field Museum of Natural History.</citation>
                <citation identifier="364">Yamaç, M., &amp; Bilgili, F. (2006) Antimicrobial Activities of Fruit Bodies and/or Mycelial Cultures of Some Mushroom Isolates. Pharmaceutical Biology, 44, 660-667. https://doi.org/10.1080/13880200601006897</citation>
                <citation identifier="366">Yilmaz, N., López-Quintero, C. A., Vasco-Palacios, A. M., Frisvad, J. C., Theelen, B., Boekhout, T., Samson, R. A., &amp; Houbraken, J. (2016). Four novel Talaromyces species isolated from leaf litter from Colombian Amazon rain forests. Mycological Progress, 15(10–11), 1041–1056. https://doi.org/10.1007/s11557-016-1227-3</citation>
                <citation identifier="367">Yousaf, N., Niazi, A., &amp; Khalid, A. (2012). New records of noteworthy gasteroid fungi from Pakistan. Mycotaxon, 119, 261–267.</citation>
                <citation identifier="368">Yuyama, K. T., Pereira, J., Maki, C. S., &amp; Ishikkawa, N. K. (2013). Daldinia eschscholtzii (Ascomycota, Xylariaceae) isolated from the Brazilian Amazon: taxonomic features and mycelial growth conditions. Acta Amazonica, 43(1), 1–8.</citation>
                <citation identifier="370">Zhang, B. C. (1991). Revision of Chinese species of Elaphomyces (Ascomycotina, Elaphomycetales). Mycological Research, 95(8), 973–985. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80095-6</citation>
                <citation identifier="371">Zhang, G. Q., Tian, T., Liu, Y. P., Wang, H. X., &amp; Chen, Q. J. (2011) A laccase with anti-proliferative activity against tumor cells from a white root fungus Abortiporus biennis. Process Biochemistry, 46(12), 2336-2340. https://doi.org/10.1016/j.procbio.2011.09.020</citation>
                <citation identifier="372">Zhang, K., Li, Q., Wu, W., Yang, J., &amp; Zou, W. (2019). Wheat Qu and Its Production Technology, Microbiota, Flavor, and Metabolites. Journal of Food Science, 84(9), 2373–2386. https://doi.org/10.1111/1750-3841.14768</citation>
                <citation identifier="374">Fernández-Moriano, C., Gómez-Serranillos, M. P., &amp; Crespo, A. (2016). Antioxidant potential of lichen species and their secondary metabolites. A systematic review. Pharmaceutical Biology, 54(1), 1–17. https://doi.org/10.3109/13880209.2014.1003354</citation>
                <citation identifier="375">Jayalal, U., Divakar, P. K., Joshi, S., Oh, S. O., Koh, Y. J., &amp; Hur, J. S. (2013). The lichen genus Parmotrema in South Korea. Mycobiology, 41(1), 25–36. https://doi.org/10.5941/MYCO.2013.41.1.25</citation>
                <citation identifier="376">Ranković, B., &amp; Mišić, M. (2008). The antimicrobial activity of the lichen substances of the lichens Cladonia furcata, Ochrolechia androgyna, Parmelia caperata and Parmelia conspresa. Biotechnology and Biotechnological Equipment, 22(4), 1013–1016. https://doi.org/10.1080/13102818.2008.10817601</citation>
                <citation identifier="377">Perico-Franco, L. S. (2011). Antioxidantes de los líquenes Stereocaulon strictum(Stereocaulaceae) y Lobariella pallida (Lobariaceae) y determinación de su potencial citotoxicidad. Tésis de pregrado, Universidad Nacional de Colombia. 199 p. http://www.bdigital.unal.edu.co/10563/</citation>
                <citation identifier="378">Bischoff, J. F., Rehner, S. A., &amp; Humber, R. A. (2009). A multilocus phylogeny of the Metarhizium anisopliae lineage. Mycologia, 101(4), 512–530. https://doi.org/10.3852/07-202</citation>
                <citation identifier="379">Villamizar, L., Arriero, C., Bosa, C., &amp; Cotes, A. M. (2004). Desarrollo de preformulados a base de Nomuraea rileyi para el control de Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae). Revista Colombiana de Entomología, 30 (1)</citation>
                <citation identifier="381">Grijalba, E. P., Espinel, C., Cuartas, P. E., Chaparro, M. L., &amp; Villamizar, L. F. (2018). Metarhizium rileyi biopesticide to control Spodoptera frugiperda: Stability and insecticidal activity under glasshouse conditions. Fungal Biology, 122(11), 1069–1076. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2018.08.010</citation>
                <citation identifier="382">Aguirre, N., Villamizar L., Espinel C., Marina Cotes, A. (2009). Efecto del pH y de la actividad de agua sobre el desarrollo de Nomuraea rileyi (Hyphomycetes). Revista Colombiana de Entomología, 35(2), 138–144.</citation>
                <citation identifier="383">Cabello, M., Irrazabal, G., Bucsinszky, A. M., Saparrat, M., &amp; Schalamuk, S. (2005). Effect of an arbuscular mycorrhizal fungus, Glomus mosseae, and a rock-phosphate-solubilizing fungus, Penicillium thomii, on Mentha piperita growth in a soilless medium. Journal of Basic Microbiology, 45(3), 182–189. https://doi.org/10.1002/jobm.200410409</citation>
                <citation identifier="384">García Murillo, P. G. (2018). Producción de orellanas (Pleurotus ostreatus) como alternativa para el tratamiento de residuos sólidos de origen vegetal en Bogotá D.C. Redes de Ingeniería, 9(1), 26–31. https://doi.org/10.14483/2248762x.13858</citation>
                <citation identifier="385">Cervantes Forero, N. (2015). Cultivando setas de la especie Pleurotus pulmonarius en el interior de las viviendas como un modelo empresarial que le permitirá a las victimas del desplazamiento forzado la superación de su vulnerabilidad y propiciar su reinclusión social. Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas, 27, 80–87.</citation>
                <citation identifier="388">Cifuentes Triana, Y. A. (2016). Secuenciación y caracterización del genoma de la cepa Saccharomyces cerevisiae 202-3 con potencial para la producción de etanol de segunda generación. Tésis de pregrado. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. 165 p. http://www.bdigital.unal.edu.co/55418/</citation>
                <citation identifier="389">Kneifel, H., Konig, W., Loeffler, W., &amp; Muller, R. (1977). Ophiocordin, an Antifungal Antibiotic of Cordyceps ophioglossoides. Archives of Microbiology, 113, 121–130</citation>
                <citation identifier="390">Hobbs, L. (1995). Medicinal mushrooms: and exploration of tradition, healing and culture. 3th edition. Loveland, Colorado: Interweave Press, Inc. 161 p.</citation>
                <citation identifier="391">Henkel, T. W., Wilson, A. W., Aime, M. C., Dierks, J., Uehling, J. K., Roy, M., Schimann, H., Wartchow, F., &amp; Mueller, G. M. (2014). Cantharellaceae of Guyana II: New species of Craterellus, new South American distribution records for Cantharellus guyanensis and Craterellus excelsus, and a key to the Neotropical taxa. Mycologia, 106(2), 307–324. https://doi.org/10.3852/106.2.307</citation>
                <citation identifier="392">Moncada, B., Lücking, R., &amp; Suárez, A. (2014). Molecular phylogeny of the genus Sticta (lichenized Ascomycota: Lobariaceae) in Colombia. Fungal Diversity, 64(1), 205–231. https://doi.org/10.1007/s13225-013-0230-0</citation>
                <citation identifier="393">Franco-Molano, A. E. (1999). A new species of Macrolepiota from Colombia. Actualidades Biológicas, 21 (70), 13–17.</citation>
                <citation identifier="394">Shrestha, B. (2011). Diversity of Cordyceps Fungi in Nepal. Nepal Journal of Science and Technology, 12, 103–110. https://doi.org/10.3126/njst.v12i0.6487</citation>
                <citation identifier="395">Kobayasi, Y. (1981). Revision of the Cordyceps and its allies 2. Bulletin of the National Science Museum, Series B Botany, 123–129.</citation>
                <citation identifier="396">Crous, P. W., Verkley, G. J. M., &amp; Groenewald, J. Z. (2006). Eucalyptus microfungi known from culture. 1. Cladoriella and Fulvoflamma genera nova, with notes on some other poorly known taxa. Studies in Mycology, 55, 53–63. https://doi.org/10.3114/sim.55.1.53</citation>
                <citation identifier="397">Cubillos, J., Paez, A., Valero, N., Mejía, L., &amp; Gámez, R. (2008). Efecto biocontrolador de Trichoderma harzianum frente a Fusarium oxysporum causante de la secadera del maracuyá en la zona bananera del Magdalena - Colombia. Fitopatología Colombiana, 32(1), 19–23.</citation>
                <citation identifier="398">Piepenbring, M. (2002). Annotated checklist and key for smut fungi in Colombia. Caldasia, 24(1), 103–119</citation>
                <citation identifier="399">Wrinkler, D. (2020). Nigelia martiale. Mushroaming Photo Gallery. Recuperado de: http://mushroaming.com/gallery/picture.php?/2982/category/31 Consultado el 24 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="400">Kuo, M. (2017) Podaxis pistillaris. Recuperado de: https://www.mushroomexpert.com/podaxis_pistillaris.html Consultado el 25 de Agosto de 2020</citation>
                <citation identifier="401">Pérez-Ortega, S., Fernández-Mendoza, F., Raggio, J., Vivas, M., Ascaso, C., Sancho, L. G., Printzen, C., &amp; De Los Ríos, A. (2012). Extreme phenotypic variation in Cetraria aculeata (lichenized Ascomycota): Adaptation or incidental modification?. Annals of Botany, 109(6), 1133–1148. https://doi.org/10.1093/aob/mcs042</citation>
                <citation identifier="402">Cruz, R., Assis, N. M., Silva, M. A., &amp; Baseia I. G. (2014). Revision of the genus Cyathus (Basidiomycota) from the herbaria of northeast Brazil. Mycosphere, 5(4), 531–540. https://doi.org/10.5943/mycosphere/5/4/5</citation>
                <citation identifier="403">Heiomarsson, S. (2000). The genus Dermatocarpon (Verrucariales, lichenized Ascomycotina) in the Nordic countries. Nordic Journal of Botany, 20(5), 605–639. https://doi.org/10.1111/j.1756-1051.2000.tb01612.x</citation>
                <citation identifier="404">Delgat, L., Dierickx, G., De Wilde, S., Angelini, C., De Crop, E., De Lange, R., Halling, R., Manz, C., Nuytinck, J., &amp; Verbeken, A. (2019). Looks can be deceiving: The deceptive milkcaps (Lactifluus, Russulaceae) exhibit low morphological variance but harbour high genetic diversity. IMA Fungus, 10(1), 1–16. https://doi.org/10.1186/s43008-019-0017-3</citation>
                <citation identifier="405">Mata, J. L., Petersen, R. H., Hughes, K. W. (2019). The genus Lentinula in the Americas. Mycologia, 93(6), 1102–1112. https://doi.org/10.1080/00275514.2001.12063244</citation>
                <citation identifier="406">Wright, J. &amp; Albertó, E. (2002). Hongos, Guía de la región Pampeana I. Hongos con laminillas. Buenos Aires, Argentina: LOLA. 279 p.</citation>
                <citation identifier="407">Moncada, B., Lücking, R., &amp; Betancourt-Macuase, L. (2013). Phylogeny of the Lobariaceae (lichenized Ascomycota: Peltigerales), with a reappraisal of the genus Lobariella. Lichenologist, 45(2), 203–263. https://doi.org/10.1017/S0024282912000825</citation>
                <citation identifier="408">Cardona-Yepes, B., &amp; Restrepo-Restrepo, J. D. (1997). Inventario de macromicetes de bosques y praderas de la finca la Romera, Municipio de Sabaneta, Departamento de Antioquia. Corporación Antónoma Regional del centro de Antioquia. 182 p.</citation>
                <citation identifier="409">Hywel-jones, N. (1995). Notes on Cordyceps nutans. And its anamorph, a pathogen of hemipteran bugs in Thailand. Mycological Research, 99(6), 724–726.</citation>
                <citation identifier="410">Kinjo, N., &amp; Zang, M. (2001). Morphological and phylogenetic studies on Cordyceps sinensis distributed in southwestern China. Mycoscience, 42(6), 567–574. https://doi.org/10.1007/BF02460956</citation>
                <citation identifier="411">Pegler, D. N. (1983). The genus Lentinula (Tricholomataceae tribe Collybieae). Herbarium, Royal Botanic Gardens, Kew, Richmond., 227–239.</citation>
                <citation identifier="412">Menolli, J. N., Asai, T., Capelari, M., &amp; Doretto, P.-M. D. (2010). Morphological and Molecular Identification of four Brazilian Commercial Isolates of Pleurotus spp. and Cultivation on Corncob. Brazilian Archives of Biology and Technology an International Journal, 53(2), 397-408.</citation>
                <citation identifier="413">Lechner, B. E., Wright, J. E., &amp; Albertó, E. (2004). The genus Pleurotus in Argentina. Mycologia, 96(4), 845–858.</citation>
                <citation identifier="415">Niveiro, N., &amp; Popoff, O. F. (2011). Pseudohydnum gelatinosum (Tremellales, Basidiomycota) en las Yungas Argentinas. Bol. Soc. Argent. Bot. , 46(3–4), 1–4.</citation>
                <citation identifier="416">González-Ávila, P., Villegas-Ríos, M., &amp; Estrada-Torres, A. (2013). Especies del género Phaeoclavulina en México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 91–110.</citation>
                <citation identifier="417">Nouhra, E. R., Caffot, M. L., &amp; Pastor, N. (2012). The species of Scleroderma from Argentina, including a new species from the Nothofagus forest. Mycologia, 104(2), 488–495.</citation>
                <citation identifier="418">Bazzalo, M., &amp; Wright, J. (1982). Survey of the Argentine species of the Ganoderma lucidum complex. Mycotaxon., 16(1), 293–325.</citation>
                <citation identifier="419">Bessette, A. E., Roody, W. C., Bessette, A. R., &amp; Dunaway, D. L. (2007). Mushrooms of the Southeastern United States Syracuse, Estados Unidos: University Press. 384 p.</citation>
                <citation identifier="420">Trierveiler-Pereira, L., Romero, A. I., Baltazar, M. J., &amp; Loguercio-Leite, C. (2008). Addition to the knowledge of Xylaria (Xylariaceae, Ascomycota) in Santa Catarina, Southern Brazil. Mycotaxon Styles, 1–19.</citation>
                <citation identifier="421">Kurtzman, C., &amp; Fell, J. W. (1998). The yeasts: a taxonomic study 4th ed. Amsterdam, Países Bajos: Elsevier. 1055 p.</citation>
                <citation identifier="422">Smith, M. T., &amp; Grinsven, A. M. (1984). Dekkera anomala sp. nov., the teleomorph of Brettanomyces anomalus, recovered from spoiled soft drinks. Antonie van Leeuwenhoek, 50, 143–148.</citation>
                <citation identifier="423">Kot, A. M., Błażejak, S., Kurcz, A., Gientka, I., &amp; Kieliszek, M. (2016). Rhodotorula glutinis—potential source of lipids, carotenoids, and enzymes for use in industries. Applied Microbiology and Biotechnoly, 100(6), 6103–6117.</citation>
                <citation identifier="424">Stewart, G. G. (2014). Saccharomyces: Saccharomyces cerevisiae. Pp. 309–315. En: Batt, C. (ed) Encyclopedia of Food Microbiology, 2nd edition. Academic Press.</citation>
                <citation identifier="425">Casalone, E., Barberio, C., Cappellini, L., &amp; Polsinelli, M. (2005). Characterization of Saccharomyces cerevisiae natural populations for pseudohyphal growth and colony morphology. Research in Microbiology, 156, 191–200.</citation>
                <citation identifier="426">Harzevili, F. D. (2014). Yarrowia lipolytica: An Overview. Pp. 1–16. En: Harzevili, F. D. (ed) Biotechnological Applications of the Yeast Yarrowia lipolytica. Cham, Switzerland: Springer</citation>
                <citation identifier="427">Onions, A. H. S., &amp; Brady, B.L. (1987) Taxonomy of Penicillium and Acremonium. En: Peberdy J.F. (eds). Penicillium and Acremonium. Biotechnology Handbooks, vol 1.  Boston, MA: Springer.  36 p. https://doi.org/10.1007/978-1-4899-1986-1_1</citation>
                <citation identifier="428">Jones, D., Vaughanz, D., &amp; Mchardy, W. (1996). A critical examination of SEM ultrastructural features in two Penicillium thomii isolates from soil. Mycological Research, 100(2), 223–228.</citation>
                <citation identifier="429">Martin, K., &amp; Gilbertson, R. (1978). Synopsis of wood-rotting fungi on spruce in North America: II. Mycotaxon, 7(2), 337–356.</citation>
                <citation identifier="430">Ginns, J. (2007). Annotated key to Pacific Northwest Polypores. Vancouver Mycological Society, 1–30.</citation>
                <citation identifier="431">Siddiquee, S. (2017). Practical Handbook of the Biology and Molecular Diversity of Trichoderma Species from Tropical Regions. Springer International Publishing. 102 p.</citation>
                <citation identifier="433">Anderson, P. J., &amp; Ickis, G. M. (1921). Massachusetts Species of Helvella. Mycologia, 13(4-5), 201–229.</citation>
                <citation identifier="434">Skrede, I., Carlsen, T., &amp; Schumacher, T. (2017). A synopsis of the saddle fungi (Helvella: Ascomycota) in Europe – species delimitation, taxonomy and typification. Persoonia, 39, 201–253.</citation>
                <citation identifier="435">Ndong, H. E., Degreef, J., &amp; Kesel, A. D. (2011). Champignons comestibles des forêts denses d’Afrique centrale - Taxonomie et identification (Vol. 10). Taxonomie et identification. Bélgica: ABC Taxa. 254 p.</citation>
                <citation identifier="436">Baroni, T. J. (2017). Mushrooms of the Northeastern United States and Eastern Canada. Portland, Oregon: Timber Press. 600 p.</citation>
                <citation identifier="437">Sesli, E., Moreno, G., &amp; Altés, A. (2013). A study on the of gasteroid fungi spore morphology of gasteroid fungi collected from Trabzon. Mantar Dergisi/The Journal of Fungus, 4(1), 1–5.</citation>
                <citation identifier="438">Calonge, F. D., Mata, M., &amp; Carranza, J. (2005). Contribución al catálogo de los Gasteromycetes (Basidiomycotina, Fungi) de Costa Rica. Anales del Jardín Botánico de Madrid, 62(1), 23–45.</citation>
                <citation identifier="439">Castellano, M. A. (1999). Handbook to Strategy 1 Fungal Taxa from the Northwest Forest Plan (Vol. 476). US Department of Agriculture, Forest Service, Pacific Northwest Research Station. 195 p.</citation>
                <citation identifier="440">Doty, M. S. (1944). Clavaria, the Species Known From Oregon and the Pacific Northwest. Oregon: Oregon State College. 91 p.</citation>
                <citation identifier="441">Zmitrovich, I. V., Ezhov, O. N., &amp; Wasser, S. P. (2012). A Survey of Species of Genus Trametes Fr. (Higher Basidiomycetes) with Estimation of Their Medicinal Source Potential. International Journal of Medicinal Mushrooms, 14(3), 307–319.</citation>
                <citation identifier="446">Singer, R., Garcia, J., &amp; Gomez, L. D. (1990) The Boletineae of Mexico and Central America I &amp; II. Nova Hedwigia, 98, 1–70.</citation>
                <citation identifier="447">ANDES_F Colección de Hongos Uniandes (Sin publicar). Colección de Hongos. Base de datos Specify. Universidad de Los Andes, Bogotá</citation>
                <citation identifier="448">Kim, H., Yoo, S. J., &amp; Kang, H. A. (2015). Yeast synthetic biology for the production of recombinant therapeutic proteins. FEMS Yeast Research, 15(1), 1–16. https://doi.org/10.1111/1567-1364.12195</citation>
                <citation identifier="449">Tamayo-Molano, P. J. (2007). Enfermedades del Aguacate. Revista Politénica, 3(4), 51–70. https://revistas.elpoli.edu.co/index.php/pol/article/view/62</citation>
                <citation identifier="451">Guzmán, G. (1986). Distribucion de los hongos en la region del Caribe y zonas vecinas. Caldasia, 15 (71–75), 103–120.</citation>
                <citation identifier="452">Molina-Valero, L. A. (1980). Los hongos de Colombia - vi. Reconocimiento e identificacion de Ustilaginales en Colombia. Caldasia, 13 (61), 49–96.</citation>
                <citation identifier="453">Fungifert. Ectomicorrizas hidrosolubles (inoculante ectomicorricico para pinos y cipreses)- El semillero su aliado local, Bogotá, Colombia. Recuperado de: www.elsemillero.net Consultado el 19 de septiembre de 2020.</citation>
                <citation identifier="454">Prang, G. (2018). Yanomami Mushrooms. Recuperado de: https://culinarycultureconnections.com/blogs/producers/yanomami-mushrooms. Consultado el 17 de septiembre de 2020</citation>
                <citation identifier="455">Rubiano-Flórez, D. F., Chegwin-Angarita, C., Melo, O. O., &amp; Nieto-Ramírez, I. J. (2019). Estudio comparativo de la producción de biomasa en fermentación superficial y en estado líquido de macromicetos con diferentes fuentes nutrimentales. Revista Colombiana de Biotecnología, 21(1), 39–46. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v21n1.68869</citation>
                <citation identifier="456">Tulloss, R. E., Ovrebo, C., &amp; Halling, R. (1992). Studies on Amanita (Amanitaceae) from Andean Colombia. Memories of the  New York Botanical Garden, 66, 1–46.</citation>
                <citation identifier="457">Tylš, F., Páleníček, T., &amp; Horáček, J. (2014). Psilocybin - Summary of knowledge and new perspectives. European Neuropsychopharmacology, 24(3), 342–356. https://doi.org/10.1016/j.euroneuro.2013.12.006</citation>
                <citation identifier="458">Guzman, G. (1995). Supplement to the monograph of the genus Psilocybe. Bibliotheca Mycologica 159, 91–141</citation>
                <citation identifier="459">Guzman, G., Saldarriaga, Y., Pineda, F., Garcia, G., &amp; Velazquez, L. F. (1994). New species of Psilocybe from Colombia and discussion on the known species. Mycotaxon, 51, 225–235.</citation>
                <citation identifier="461">Peña-Venegas, C. P. &amp; Vasco-Palacios, A. M. (2019). Endo- and Ectomycorrhizas in Tropical Ecosystems of Colombia. Pp. 111–146. En: Pagano, M. C. y Lugo, M. A. (eds). Mycorrhizal Fungi in South America. Cham, Switzerland: Springer Nature Switzerland AG.</citation>
                <citation identifier="462">Holguin-Munera, J. F., Escobar Oquendo, A. E., Monroy Rodríguez, R., &amp; Muñoz Marín, G. (2017). Removing reactive dyes using fungus Bjerkandera adusta. Informador Técnico (Colombia), 81(2), 19–11. https://doi.org/10.23850/22565035.877</citation>
                <citation identifier="463">Moya-Álvarez, L. 2012. Determinación de la capacidad celulolítica de consorcios de hongos provenientes de bosque Altoandino in vitro en tusas de palma de aceite. Tesis de maestria. Universidad Militar Nueva Granada, Bogota.</citation>
                <citation identifier="464">Moya-Alvarez, L. A., &amp; Torres R., E. (2012). Hydrolysis of cellulose and oil palm empty fruit bunches by using consortia of fungi isolated from the soil of Colombian high andean forest. Agronomia Colombiana, 30(3), 411–418</citation>
                <citation identifier="465">Chaparro, D. F., Rosas, D. C., &amp; Varela, A. (2009). Aislamiento y evaluación de la actividad enzimática de hongos descomponedores de madera (Quindío, Colombia). Revista Iberoamericana de Micologia, 26(4), 238–243. https://doi.org/10.1016/j.riam.2009.03.005</citation>
                <citation identifier="466">Gualdron-Arenas, C., Suarez-Navarro, A. L., &amp; Valencia-Zapata, H. (1997). Hongos del suelo aislados de zonas de vegetacion natural del paramo de Chisaca, Colombia. Caldasia, 19(1–2), 235–245.</citation>
                <citation identifier="467">García D, A., Bustillo P, A. E., Castro V, U., &amp; Arenas B, Y. (2012). Selección de hongos entomopatógenos para controlar salivazos (hemiptera: Cercopidae) de la caña de azúcar en Colombia. Revista Colombiana de Entomologia, 38(2), 252–259.</citation>
                <citation identifier="468">Goldbeck, R., Ramos, M. M., Pereira, G. A. G., &amp; Maugeri-Filho, F. (2013). Cellulase production from a new strain Acremonium strictum isolated from the Brazilian Biome using different substrates. Bioresource Technology, 128, 797–803. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2012.10.034</citation>
                <citation identifier="469">Torres, D. E., Rojas-Martínez, R. I., Zavaleta-Mejía, E., Guevara-Fefer, P., Márquez-Guzmán, G. J., &amp; Pérez-Martínez, C. (2017). Cladosporium cladosporioides and Cladosporium pseudocladosporioides as potential new fungal antagonists of Puccinia horiana Henn., the causal agent of chrysanthemum white rust. PLoS ONE, 12(1), 1–16. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0170782</citation>
                <citation identifier="470">Gámez-Guzmán, A., Gaigl, A., &amp; Torres-Rojas, E. (2019). Potential of a Cladosporium cladosporioides strain for the control of Tetranychus urticae koch (Acari: Tetranychidae) under laboratory conditions. Agronomia Colombiana, 37(1), 21–26. https://doi.org/10.15446/agron.colomb.v37n1.73353</citation>
                <citation identifier="471">Chen, A. J., Frisvad, J. C., Sun, B. D., Varga, J., Kocsubé, S., Dijksterhuis, J., Kim, D. H., Hong, S. B., Houbraken, J., &amp; Samson, R. A. (2016). Aspergillus section Nidulantes (formerly Emericella): Polyphasic taxonomy, chemistry and biology. Studies in Mycology, 84, 1–118. https://doi.org/10.1016/j.simyco.2016.10.001</citation>
                <citation identifier="473">Birolli, W. G., Yamamoto, K. Y., de Oliveira, J. R., Nitschke, M., Seleghim, M. H. R., &amp; Porto, A. L. M. (2015). Biotransformation of dieldrin by the marine fungus Penicillium miczynskii CBMAI 930. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 4(1), 39–43. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2014.06.002</citation>
                <citation identifier="474">Sišić, A., Baćanović, J., &amp; Finckh, M. R. (2017). Endophytic Fusarium equiseti stimulates plant growth and reduces root rot disease of pea (Pisum sativum L.) caused by Fusarium avenaceum and Peyronellaea pinodella. European Journal of Plant Pathology, 148(2), 271–282. https://doi.org/10.1007/s10658-016-1086-4</citation>
                <citation identifier="475">Kikot, G. E., Hours, R. A., &amp; Alconada, T. M. (2010). Extracellular enzymes of Fusarium graminearum isolates. Brazilian Archives of Biology and Technology, 53(4), 779–783. https://doi.org/10.1590/S1516-89132010000400005</citation>
                <citation identifier="476">Lee, H. S., Phat, C., Nam, W. S., &amp; Lee, C. (2014). Optimization of culture conditions of Fusarium solani for the production of neoN-methylsansalvamide. Bioscience, Biotechnology and Biochemistry, 78(8), 1421–1427. https://doi.org/10.1080/09168451.2014.921554</citation>
                <citation identifier="477">Pottier, I., Gente, S., Vernoux, J. P., &amp; Guéguen, M. (2008). Safety assessment of dairy microorganisms: Geotrichum candidum. International Journal of Food Microbiology, 126(3), 327–332. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2007.08.021</citation>
                <citation identifier="478">Hoyos-Carvajal, L., Orduz, S., &amp; Bissett, J. (2009). Genetic and metabolic biodiversity of Trichoderma from Colombia and adjacent neotropic regions. Fungal Genetics and Biology, 46(9), 615–631. https://doi.org/10.1016/j.fgb.2009.04.006</citation>
                <citation identifier="479">Smith, A., Beltrán, C. A., Kusunoki, M., Cotes, A. M., Motohashi, K., Kondo, T., &amp; Deguchi, M. (2013). Diversity of soil-dwelling Trichoderma in Colombia and their potential as biocontrol agents against the phytopathogenic fungus Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary. Journal of General Plant Pathology, 79(1), 74–85. https://doi.org/10.1007/s10327-012-0419-1</citation>
                <citation identifier="480">Zhang, S., Gan, Y., Ji, W., Xu, B., Hou, B., &amp; Liu, J. (2017). Mechanisms and characterization of Trichoderma longibrachiatum T6 in suppressing nematodes (Heterodera avenae) in wheat. Frontiers in Plant Science, 8(September), 1–20. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.01491</citation>
                <citation identifier="481">Herrera-Parra, E., Cristóbal-Alejo, J., &amp; Ramos-Zapata, J. A. (2017). Trichoderma strains as growth promoters in Capsicum annuum and as biocontrol agents in Meloidogyne incognita. Chilean Journal of Agricultural Research, 77(4), 318–324. https://doi.org/10.4067/S0718-58392017000400318</citation>
                <citation identifier="482">Marques, E., Martins, I., Oliveira, M. De, Cunha, C., Lima, M. A., Inglis, P. W., Correa, S., Mello, M., &amp; Ribeiro, D. (2016). New isolates of Trichoderma antagonistic to Sclerotinia sclerotiorum. Biota Neotropica, 16(3).</citation>
                <citation identifier="483">Aamir, M., Kashyap, S. P., Zehra, A., Dubey, M. K., Singh, V. K., Ansari, W. A., Upadhyay, R. S., &amp; Singh, S. (2019). Trichoderma erinaceum Bio-Priming Modulates the WRKYs Defense Programming in Tomato Against the Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (Fol) Challenged Condition. Frontiers in Plant Science, 10. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00911</citation>
                <citation identifier="484">Jaklitsch, W. M., Samuels, G. J., Ismaiel, A., &amp; Voglmayr, H. (2013). Disentangling the Trichoderma viridescens complex. Persoonia: Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 31, 112–146. https://doi.org/10.3767/003158513X672234</citation>
                <citation identifier="485">Mayo-Prieto, S. (2017). Evaluación de Trichoderma spp. en el control biológico de Rhizoctonia solani y la respuesta defensiva en plantas de alubia pertenecientes a la IGP &quot;Alubia La Bañeza León&quot;. Tesis doctoral. Universidad de León, León, España. Disponible en: http://buleriabuleria.unileon.es</citation>
                <citation identifier="486">Martinez, D., Berka, R. M., Henrissat, B., Saloheimo, M., Arvas, M., Baker, S. E., Chapman, J., Chertkov, O., Coutinho, P. M., Cullen, D., Danchin, E. G. J., Grigoriev, I. V., Harris, P., Jackson, M., Kubicek, C. P., Han, C. S., Ho, I., Larrondo, L. F., De Leon, A. L., Brettin, T. S. (2008). Genome sequencing and analysis of the biomass-degrading fungus Trichoderma reesei (syn. Hypocrea jecorina). Nature Biotechnology, 26(5), 553–560. https://doi.org/10.1038/nbt1403</citation>
                <citation identifier="487">Hao, G., Chen, H., Gu, Z., Zhang, H., Chen, W., &amp; Chen, Y. Q. (2016). Metabolic engineering of Mortierella alpina for enhanced arachidonic acid production through the NADPH-supplying strategy. Applied and Environmental Microbiology, 82(11), 3280–3288. https://doi.org/10.1128/AEM.00572-16</citation>
                <citation identifier="488">Grantina-Ievina, L., Berzina, A., Nikolajeva, V., Mekss, P., &amp; Muiznieks, I. (2014). Production of fatty acids by Mortierella and Umbelopsis species isolated from temperate climate soils. Environmental and Experimental Biology, 12, 15–27. http://eeb.lu.lv/EEB/201403/EEB_12_Grantina-Ievina.pdf</citation>
                <citation identifier="489">Wei, H., Wang, W., Yarbrough, J. M., Baker, J. O., Laurens, L., van Wychen, S., Chen, X., Taylor, L. E., Xu, Q., Himmel, M. E., &amp; Zhang, M. (2013). Genomic, Proteomic, and Biochemical Analyses of Oleaginous Mucor circinelloides: Evaluating Its Capability in Utilizing Cellulolytic Substrates for Lipid Production. PLoS ONE, 8(9), 1–12. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0071068</citation>
                <citation identifier="490">Alves, M. H., De Campos-Takaki, G. M., Okada, K., Ferreira Pessoa, I. H., &amp; Milanez, A. I. (2005). Detection of extracellular protease in Mucor species. Revista Iberoamericana de Micologia, 22(2), 114–117. https://doi.org/10.1016/S1130-1406(05)70020-6</citation>
                <citation identifier="491">Frisvad, J. C., Smedsgaard, J., Larsen, T. O., &amp; Samson, R. A. (2004). Mycotoxins, drugs and other extrolites produced by species in Penicillium subgenus Penicillium. Studies in Mycology, 49, 201–241.</citation>
                <citation identifier="492">Venkata, V., &amp; Panda, T. (1999). Studies on production of griseofulvin. Pp. 489–495. En: Bioprocess Engineering. Springer-Verlag</citation>
                <citation identifier="493">Salgado-Barreiro, C.S., Bravo-Patiño, A., Wang, E.T &amp; Cárdenas-Navarro, R. (2012). Efecto de la inoculación con Glomus intraradices y de la fertilización nitrogenada en el crecimiento de plantas de fresa. Scientia Agropecuaria, 2, 171–179.</citation>
                <citation identifier="494">Zambrano González, J. A., &amp; Díaz Ariza, L. A. (2008). Efecto de la inoculación de Azospirillum brasilense y Glomus sp: en Gmelina arborea durante su germinación y manejo en vivero. Universitas Scientiarum, 162–170.</citation>
                <citation identifier="495">Almeida-Santana, N. A., Avelar, Ferreira, P. A., Peligrinotti-Tarouco, C., Sulzbacher-Schardong, I., Antoniolli, Z. I., Teixeira-Nicoloso, F., &amp; Seminoti Jacques, R. J. (2019). Earthworms and mycorrhization increase copper phytoextraction by Canavalia ensiformis in sandy soil. Ecotoxicology and Environmental Safety, 182, 109383. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.109383</citation>
                <citation identifier="496">Baiyee, B., Pornsuriya, C., Ito, S. &amp; Sunpapao, A. (2019). Trichoderma spirale T76-1 displays biocontrol activity against leaf spot on lettuce (Lactuca sativa L.) caused by Corynespora cassiicola or Curvularia aeria. Biological Control, 129, 195–200. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2018.10.018</citation>
                <citation identifier="497">Torres-Arias, Y., Ortega Fors, R. O., Nobre, C., Furrazola Gómez, E., &amp; Louro Berbara, R. L. L. (2017). Production of native arbuscular mycorrhizal fungi inoculum under different environmental conditions. Brazilian Journal of Microbiology, 48(1), 87–94. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2016.10.012</citation>
                <citation identifier="498">Rodríguez-Morelos, V. H., Soto-Estrada, A., Pérez-Moreno, J., Franco-Ramírez, A., &amp; Díaz-Rivera, P. (2014). Arbuscular mycorrhizal fungi associated with the rhizosphere of seedlings and mature trees of Swietenia macrophylla (Magnoliophyta: Meliaceae) in Los Tuxtlas, Veracruz, Mexico. Revista Chilena de Historia Natural, 87(1), 1–10. https://doi.org/10.1186/s40693-014-0009-z</citation>
                <citation identifier="501">Hernandez-Cuevas, L., Guerra-De la Cruz, V., Santiago-Martínez, G., &amp; Cuatlal-Cuahutencos, P. (2011). Propagation and Mycorrhization of Native Plants With Soil Restoration Potential. Revista Mexicana de Ciencias, 2(7), 87–96.</citation>
                <citation identifier="502">Wang, F. Y., Lin, X. G., &amp; Yin, R. (2007). Inoculation with arbuscular mycorrhizal fungus Acaulospora mellea decreases Cu phytoextraction by maize from Cu-contaminated soil. Pedobiologia, 51(2), 99–109. https://doi.org/10.1016/j.pedobi.2007.02.003</citation>
                <citation identifier="503">Carreón Abud, Y., Paleo, S. A., Gavito, M. E., Javier, D., Solís, M., &amp; Chávez, R. J. (2014). Inoculación micorrízico arbuscular en portainjertos de plantas de aguacate cv ‘ Hass ’ en viveros de Michoacán, México.  Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 5, 847–857.</citation>
                <citation identifier="504">Espinel Correal, C., Torres Torres, L., Villamizar Rivero, L., Bustillo Pardey, A., Zuluaga Mogollón, M. V., Cotes Prado, A. M. (2018). Hongos entomopatógenos en el control biológico de insectos plaga. Pp: 334–367. En: Cotes, A. M. (ed). Control biológico de fitopatógenos, insectos y ácaros, Vol. 1. Mosquera, Colombia: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia).</citation>
                <citation identifier="505">Rojas, D., Palacio, A., Ospina, S., Zapata, P., &amp; Atehortúa, L. (2012). Biotecnología de hongos basidiomicetes en el desarrollo de alimentos funcionales: procesos de secado vs. capacidad antioxidante. Vitae, 19 (1), s231–s233.</citation>
                <citation identifier="506">Pérez, U. A., Ramírez, M. M., Serralde, D. P., Peñaranda, A. M., Wilches, W. A., Ramírez, L., &amp; Rengifo, G. A. (2019). Hongos formadores de micorrizas arbusculares (HFMA) como estrategia para reducir la absorción de cadmio en plantas de cacao (Theobroma cacao). Revista Terra Latinoamericana, 37(2), 121–131. https://doi.org/10.28940/terra.v37i2.479</citation>
                <citation identifier="507">Kuo, M. (2018). Agaricus bisporus. MushroomExpert.Com. Recuperado de: http://www.mushroomexpert.com/agaricus_bisporus.html. Consultado el 23 de septiembre de 2020</citation>
                <citation identifier="508">Hubregtse, J. (2017). Fungi in Australia. Basidiomycota (Agaricomycotina II) revision, 2. Blackburn, Victoria, Australia.: E-published by the Field Naturalists Club of Victoria Inc. 336 p. Disponible en: http://www.fncv.org.au/fungi-in-australia/ Consultado el 25 de septiembre de 2020</citation>
                <citation identifier="510">Tulloss, R. E. (2020). Amanita rubescens. En: Tulloss, R. E., Yang, Z. L.,( eds). Amanitaceae studies. Disponible en: http://www.amanitaceae.org?Amanita+rubescens. Consultado el 21 de  septiembre de 2020.</citation>
                <citation identifier="512">Ge, Z. W., &amp; Yang, Z. L. (2006). The genus Chlorophyllum (Basidiomycetes) in China. Mycotaxon, 96, 181–192.</citation>
                <citation identifier="513">Senn-Irlet, B. (1992). Type studies in Crepidotus. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 14(4), 615–623.</citation>
                <citation identifier="514">Guzmán, G., Allen, J. W., &amp; Sihanonth, P. (2006). Distribution of the Hallucinogenic Mushroom Psilocybe antioquensis (Agaricomycetideae) in Colombia, Mexico, and Cambodia. International Journal of Medicinal Mushrooms, 8(1), 85–89.</citation>
                <citation identifier="515">Stamets, P. (1996). Psilocybin Mushrooms of the World: An Identification Guide. Berkely, California: Ten Speed Press. 243 p.</citation>
                <citation identifier="516">Guzmán, G., &amp; Kasuya, T. (2004). The known species of Psilocybe (Basidiomycotina, Agaricales, Strophariaceae) in Nepal. Mycoscience, 45(4), 295–297.</citation>
                <citation identifier="517">Pitt, J. I., &amp; Hocking, A. D. (2009). Fungi and food spoilage (Vol. 519). New York: Springer. 519 p.</citation>
                <citation identifier="518">Christensen, M., Frisvad, J. C., &amp; Tuthill, D. (1999). Taxonomy of the Penicillium miczynskii group based on morphology and secondary metabolites. Mycological Research, 103(5), 527–541.</citation>
                <citation identifier="519">Griffiths, C., Barker, J., Bleiker, T. O., Chalmers, R., &amp; Creamer, D. (2016). Rook&apos;s textbook of dermatology. John Wiley &amp; Sons.</citation>
                <citation identifier="520">Kamala, T., Devi, S. I., Sharma, K. C., &amp; Kennedy, K. (2015). Phylogeny and taxonomical investigation of Trichoderma spp. from Indian region of Indo-Burma biodiversity hot spot region with special reference to Manipur. BioMed research international, 2015, 1–21</citation>
                <citation identifier="521">Cabello, M. N. (1997). El Genero Mortierella (Zygomycotina, Mucorales) en Tierra del Fuego (Argentina). Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica., 33 (1–2), 53–58.</citation>
                <citation identifier="522">Gams, W. (1977). A Key to The Species of Mortierella. Persoonia,  9 (3), 381–391.</citation>
                <citation identifier="523">Watanabe, T. (2010). Pictorial atlas of soil and seed fungi: morphologies of cultured fungi and key to species. Estados Unidos: CRC press. 426 p.</citation>
                <citation identifier="524">Schipper, M. A. (1976). On Mucor circinelloides, Mucor racemosus and related species. Studies in Mycology, 12.</citation>
                <citation identifier="525">Schipper, M. A. (1973). A study on variability in Mucor hiemalis and related species. Studies in Mycology, 4.</citation>
                <citation identifier="526">Menú Crepes and Waffles-Restaurant company. Crepe Trufa Mexicana. Crepes and Waffles-Restaurant company. Disponible en: https://crepesywaffles.com. Consultado en Agosto 2020</citation>
                <citation identifier="528">Yadav, D. R., Kim, S. W., Babu, A. G., Adhikari, M., Kim, C., Lee, H. B., y otros. (2014). First Report of Mortierella alpina (Mortierellaceae, Zygomycota) Isolated from Crop Field Soil in Korea. Mycobiology, 42(4), 401–404.</citation>
                <citation identifier="529">Ríos-Hurtado, A., Medina, M., Torres, M. G., Barrios, A. L., &amp; Mosquera, L. H. (2002). Obtención de micelio y semilla para la producción de las setas Pleurotus sajor-caju y Ganoderma lucidum en el Municipio de Quibdó. Revista Universidad Tecnológica de Chocó 15: 67–71.</citation>
                <citation identifier="530">Primer Coloquio Colombiano de Micología, 2do día. (2020). Asociación Colombiana de Micología. Disponible en: https://www.youtube.com/watch?v=qzn4rhrEhQE. Consultado el 25 de septiembre de 2020</citation>
                <citation identifier="531">Li, J., Han, L. H., Liu, X., Zhao, Z. W., Yang, Z. L., &amp; Yang, Z. L. (2020). The saprotrophic Pleurotus ostreatus species complex: late Eocene origin in East Asia, multiple dispersal, and complex speciation. IMA Fungus, 11(1), 1–21. https://doi.org/10.1186/s43008-020-00031-1</citation>
                <citation identifier="532">Vilgalys, R., Smith, A., Bao Lin Sun, &amp; Miller, O. K. (1993). Intersterility groups in the Pleurotus ostreatus complex from the continental United States and adjacent Canada. Canadian Journal of Botany, 71(1), 113–128. https://doi.org/10.1139/b93-013</citation>
                <citation identifier="533">Ramírez-Cadavid, D. A., Galindo-Muñoz, A. R., Zapata-ocampo, P. A., Rojas-vahos, D. F., Fernandez-Ossa, C., &amp; Atehortúa-Garcés, L. (2010). Efecto de los campos eléctricos sobre la producción de biomasa micelial del hongo medicinal Ganoderma lucidum [(W. Curt.:FR) P. Karst. (Ganodermataceae)]. Actual Biology, 32(92), 5–17.</citation>
                <citation identifier="534">Wu, F., Yuan, Y., He, S. H., Bandara, A. R., Hyde, K. D., Malysheva, V. F., Li, D. W., &amp; Dai, Y. C. (2015). Global diversity and taxonomy of the Auricularia auricula-judae complex (Auriculariales, Basidiomycota). Mycological Progress, 14(10). https://doi.org/10.1007/s11557-015-1113-4</citation>
                <citation identifier="535">Hallenberg, N., Nilsson, R. H., &amp; Robledo, G. (2013). Species complexes in Hericium (Russulales, Agaricomycota) and a new species - Hericium rajchenbergii - from southern South America. Mycological Progress, 12(2), 413–420. https://doi.org/10.1007/s11557-012-0848-4</citation>
                <citation identifier="536">Orejuela, C. G. (1944). New or Heretofore Unreported Species of the Higher Ascomycetes from Colombia and Venezuela. Mycologia, 36(5), 429–459. https://doi.org/10.1080/00275514.1944.12017566</citation>
                <citation identifier="537">Index Fungorum (2020). Search Index fungorum. Disponible en: http://www.indexfungorum.org/Names/Names.asp</citation>
                <citation identifier="538">Naj Raj, T. R. (1989). Genera Coelomycetum. XXVI . Amarenographium, Callistospora, Hyalothyridium, Orphanocoela anam. gen.nov, Scolescosporiella, and Urohendersoniella. Canadian Journal of Botany, 67(11), 3169–3186</citation>
                <citation identifier="541">Sanjuán, T., Henao, L. G., &amp; Amat, G. (2001). Distribución espacial de Cordyceps spp. (Ascomycotina: Clavicipitaceae) y su impacto sobre las hormigas en selvas del piedemonte amazónico de Colombia. Revista de Biologia Tropical, 49(3), 945–955.</citation>
                <citation identifier="542">Herrera, C. S., Rossman, A. Y., Samuels, G. J., &amp; Chaverri, P. (2013). Pseudocosmospora, a new genus to accommodate Cosmospora vilior and related species. Mycologia, 105(5), 1287–1305. https://doi.org/10.3852/12-395</citation>
                <citation identifier="543">Raymundo, T., Escudero-Leyva, E., Soto-Agudelo, R., García-Jiménez, J., Romero-Bautista, L., &amp; Valenzuela, R. (2017). New records of Hypocreales (Sordariomycetes, Ascomycota) of the cloud forest from the Sierra Alta Hidalguense in Mexico. Acta Botanica Mexicana, 2017(120), 39–57. https://doi.org/10.21829/abm120.2017.1263</citation>
                <citation identifier="544">Luo, J., &amp; Zhuang, W. Y. (2012). Volutellonectria (Ascomycota, Fungi), a new genus with Volutella anamorphs. Phytotaxa, 44, 1–10. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.44.1.1</citation>
                <citation identifier="545">Chaverri, P., Salgado, C., Hirooka, Y., Rossman, A. Y., &amp; Samuels, G. J. (2011). Delimitation of Neonectria and Cylindrocarpon (Nectriaceae, Hypocreales, Ascomycota) and related genera with Cylindrocarpon-like anamorphs. Studies in Mycology, 68, 57–78. https://doi.org/10.3114/sim.2011.68.03</citation>
                <citation identifier="546">Monkai J, McKenzie EHC, Phillips AJL, Hongsanan S, Pem D, Liu JK, Chethana KWT, Tian Q, Ekanayaka AH, Lestari AS, Zeng M, Zhao Q, Norphanphoun C, Abeywikrama PD, Maharachchikumbura SSN, Jayawardena RS, Chen YJ, Zhao R-L, He M-Q, Raspé O, Kirk PM, Gentekaki E, Hyde KD 2019 – https://fungalgenera.org/: a comprehensive database providing web-based information for all fungal genera. Asian Journal of Mycology 2(1), 297–304, Doi 10.5943/ajom/2/1/20</citation>
                <citation identifier="548">Ammirati, J., Garnica, S., Halling, R. E., Mata, M., Mueller, G. M., &amp; Carranza, J. (2007). New Cortinarius species associated with Quercus and Comarostaphylis in Costa Rica. Canadian Journal of Botany, 85(9), 794–812. https://doi.org/10.1139/B07-067</citation>
                <citation identifier="549">Grupe, A.C., Vasco-Palacios, A. M., Boekhout, T., Smith, M., &amp; Henkel, T. (2016) Sarcodon in the Neotropics: four new species from Colombia and a key to selected species. Mycologia 108:
791–805, https://doi.org/10.3852/15-254</citation>
                <citation identifier="550">Guzmán-Davalos, L., Herrera, M. J., Cardona, B., &amp; Saldarriaga, Y. (2006). Gymnopilus tuxtlensis (Basidiomycetes, Agaricales), especie tropical conocida de México y América del Sur. Acta botánica mexicana, 76, 67–75.</citation>
                <citation identifier="551">Guzmán, G. (1983) A Systematic Revision of the Known Species Including the History, Distribution and Chemistry of the Hallucinogenic Species. Nova Hedwigia Heft 74. Vaduz, Alemania: J. Cramer. 439 p.</citation>
                <citation identifier="552">Guzmán, G., Bandala, V., Montoya, L., Saldarriaga, Y. (1989) Nuevas evidencias sobre las relaciones micofloristicas entre Africa y el Neotropico. El genéro Rugosospora Heinemann. (Fungi, Agaricales) Brenesia, 32, 107–112.</citation>
                <citation identifier="553">Guzmán G., Franco-Molano, A. E. &amp; Ramírez-Guillén, F. (2007). New section and new species of a bluing Psilocybe (Fungi, Basidiomycotina, Agaricales) from Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Fisícas y Naturales, 31(121), 469–472</citation>
                <citation identifier="554">Toro, R. &amp; Chardón, C. (1934) Über einige neue oder interessante Pilze des nordöstlichen Kolumbien. Annales Mycologici, 32 (1–2), 110–114</citation>
                <citation identifier="556">Toro, R. A. (1969). A study of the tropical American black-mildews. The Journal of Agriculture of the University of Puerto Rico, 36(1), 24–87. https://doi.org/10.46429/jaupr.v36i1.12802</citation>
                <citation identifier="558">Vasco-Palacios, A. M., Hernandez, J., Peñuela-Mora, M. C., Franco-Molano, A. E., &amp; Boekhout, T. (2018). Ectomycorrhizal fungi diversity in a white sand forest in western Amazonia. Fungal Ecology, 31, 9–18. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2017.10.003</citation>
                <citation identifier="559">Salmones, D. (2018). Pleurotus djamor, un hongo con potencial aplicación biotecnológica para el neotrópico. Scientia Fungorum, 46, 73–85. https://doi.org/10.33885/sf.2017.46.1177</citation>
                <citation identifier="560">Legon, N. W. (1999). A mycological expedition to Puerto Rico. Mycologist, 13(2), 58–62. https://doi.org/10.1016/S0269-915X(99)80007-X</citation>
                <citation identifier="561">Capelari, M., Asai, T., &amp; Ishikawa, N. (2010). Occurrence of Lentinula raphanica in Amazonas State, Brazil. Mycotaxon, 113, 355–364. https://doi.org/10.5248/113.355</citation>
                <citation identifier="562">Petersen, R. H. (1989). Contributions Toward a Monograph of Ramaria VIII. Some taxa sheltered under the name Ramaria flava. Persoonia, 14, 23–42.</citation>
                <citation identifier="563">Guzmán, G. (1997). Los nombres de los hongos y lo relacionado con ellos en América Latina: introducción a la etnomicobiota y micología aplicada de la region: sinonimia vulgar y científica. Veracruz, México: Instituto de Ecología. 356 p.</citation>
                <citation identifier="565">Ryvarden, L. (1981). Type studies in the Polypoaceae 13. Species described by J. H. Leveillè. Mycotaxon, 13, 175–186</citation>
                <citation identifier="566">Duarte, V. &amp;, Ferreira, K. (1985) Levantamiento premilinar de Xylariaceae da Amazonia. Acta Amazónica, 15 (1–2), 7–27.</citation>
                <citation identifier="567">Chardon, C. (1929). New or Interesting Tropical American Dothideales. The journal of the department of Agriculture of Porto Rico, 13 (1), 5–19</citation>
                <citation identifier="568">Corner, E. J. H. (1966). The clavarioid complex of Aphelaria and Tremellodendropsis. Transactions of the British Mycological Society, 49(2), 205–211. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/S0007-1536(66)80054-2</citation>
                <citation identifier="569">Earle, F. S. (1899). Some fungi from South America. Bulletin of the Torrey Botanical Club, 26, 632–634</citation>
                <citation identifier="570">James, S. A., Bond, C. J., Stanley, R., Ravella, S. R., Péter, G., Dlauchy, D., &amp; Roberts, I. N. (2016). Apiotrichum terrigenum sp. Nov., a soil-associated yeast found in both the UK and mainland Europe. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 66(12), 5046–5050. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001467</citation>
                <citation identifier="571">Sieverding, E., &amp; Toro, T. S. (1987). Entrophospora schenckii: a new species in the Endogonaceae from Colombia. Mycotaxon 28, 209–214.</citation>
                <citation identifier="572">Schenk, N.C. (1986). A new sporocarpic species of Acaulospora (Endogonaceae). Mycotaxon 25 (1), 111–117.</citation>
                <citation identifier="573">Barrios T., C. E., Bustillo P., A. E., Ocampo R., K. L., Reina C., M. A., &amp; Alvarado M., H. L. (2016). Eficacia de hongos entomopatógenos en el control de Leptopharsa gibbicarina (Hemiptera: Tingidae) en palma de aceite. Revista Colombiana de Entomología, 42(1), 22. https://doi.org/10.25100/socolen.v42i1.6665</citation>
                <citation identifier="574">Pinzon-Osorio, C. A., Castiblanco Zerda, A., &amp; Pinzón Osorio, J. (2017). Laternea pusilla (Phallales, phallaceae) una nueva especie para Colombia. Acta Biologica Colombiana, 22(1), 101–104. https://doi.org/10.15446/abc.v22n1.59866</citation>
                <citation identifier="575">Gamboa-Gaitán, M. A., &amp; Otero-Ospina, J. T. (2016) Colombian vanilla and its microbiota. III. Diversity and structure of the endophytic community. Acta Botanica Hungarica, 58 (3–4), 241–256.</citation>
                <citation identifier="576">Samuels, G. J. (1988). Species of Nectria (Ascomycetes, Hypocreales) having orange perithecia and colorless, striate ascospores. Brittonia, 40(3), 306–331. https://doi.org/10.2307/2807484</citation>
                <citation identifier="577">Ryvarden, L., &amp; Johansen, I. (1980). A preliminary polypore flora of East Africa. Oslo: Fungiflora. 636 p.</citation>
                <citation identifier="578">May, T. W., Milne, J., Shingles, S., Jones, R. H. (2003). Fungi of Australia. Volume 2B. Catalogue and bibliography of Australian Fungi, 2. Basidiomycota p. p. and Myxomycota p. p. Melbourne, Australia: ABRS/CSIRO Publishing. 452 p.</citation>
                <citation identifier="579">Nordén, B. (2014). Annulohypoxylon minutellum and Obolarina dryophila (Xylariales), two stromatic pyrenomycetes on oak new to Norway. Agarica, 35, 25–35. https://www.researchgate.net/profile/Bjoern_Norden/publication/269697363</citation>
                <citation identifier="580">Chaverri, P., Branco-Rocha, F., Jaklitsch, W., Gazis, R., Degenkolb, T., &amp; Samuels, G. J. (2015). Systematics of the Trichoderma harzianum species complex and the re-identification of commercial biocontrol strains. Mycologia, 107(3), 558–590. https://doi.org/10.3852/14-147</citation>
                <citation identifier="581">Ramírez-Castrillón, M., Usman, L. M., Silva-Bedoya, L. M., &amp; Osorio-Cadavid, E. (2019). Dominant yeasts associated to mango (Mangifera Indica) and rose apple (syzygium malaccense) fruit pulps investigated by culture-based methods. Anais Da Academia Brasileira de Ciencias, 91(4), 1–13. https://doi.org/10.1590/0001-3765201920190052</citation>
                <citation identifier="582">Crous, P. W., Wingfield, M. J., Richardson, D. M., Le Roux, J. J., Strasberg, D., Edwards, J., Roets, F., Hubka, V., Taylor, P. W. J., Heykoop, M., Martín, M. P., Moreno, G., Sutton, D. A., Wiederhold, N. P., Barnes, C. W., Carlavilla, J. R., Gené, J., Giraldo, A., Guarnaccia, V., Groenewald, J. Z. (2016). Fungal planet description sheets: 400–468. Persoonia: Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 36, 316–458. https://doi.org/10.3767/003158516X692185</citation>
                <citation identifier="583">Monteiro, J. S., Sarmento, P. S. M., &amp; Sotão, H. M. P. (2019). Saprobic conidial fungi associated with palm leaf litter in Eastern Amazon, Brazil. Anais Da Academia Brasileira de Ciencias, 91(3). https://doi.org/10.1590/0001-3675201920180545</citation>
                <citation identifier="584">López-Quintero, C. A., Atanasova, L., Franco-Molano, A. E., Gams, W., Komon-Zelazowska, M., Theelen, B., Müller, W. H., Boekhout, T., &amp; Druzhinina, I. (2013). DNA barcoding survey of Trichoderma diversity in soil and litter of the Colombian lowland Amazonian rainforest reveals Trichoderma strigosellum Sp. Nov. and other species. Antonie van Leeuwenhoek, International Journal of General and Molecular Microbiology, 104(5), 657–674. https://doi.org/10.1007/s10482-013-9975-4</citation>
                <citation identifier="585">Mahecha-Vásquez, G., Sierra, S., &amp; Posada, R. (2017). Diversity indices using arbuscular mycorrhizal fungi to evaluate the soil state in banana crops in Colombia. Applied Soil Ecology, 109, 32–39. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2016.09.017</citation>
                <citation identifier="587">Gams, W. (1995). An unusual species of Wardomyces (Hyphomycetes). Beihefte Zur Sydowia, 10, 67–72.</citation>
                <citation identifier="589">Soto-Medina, E., &amp; Bolaños-Rojas, A. C. (2013). Hongos macroscópicos en un bosque de niebla intervenido, vereda Chicoral, Valle del Cauca, Colombia. Biota Colombiana, 14 (2), 1–12.</citation>
                <citation identifier="590">Ruiz-Chala, G., &amp; Peláez-Rodríguez, M. (2013). Registro de hifomicetos acuáticos para la región andinoamazónica colombiana. Biota Colombiana, 14 (2), 337–340.</citation>
                <citation identifier="591">Narváez-Parra, E. X., Jerez-Jaimes, J. H., &amp; Santos-Flores, C. J. (2016). Hifomicetos ingoldianos del río Frío (Floridablanca), Santander, Colombia. Biota Colombiana, 17(2), 1–11.</citation>
                <citation identifier="595">Posada, R. H., Sánchez de Prager, M., Heredia-Abarca, G., &amp; Sieverding, E. (2018). Effects of soil physical and chemical parameters, and farm management practices on arbuscular mycorrhizal fungi communities and diversities in coffee plantations in Colombia and Mexico. Agroforestry Systems, 92(2), 555–574. https://doi.org/10.1007/s10457-016-0030-0</citation>
                <citation identifier="596">Bernal, R., Gradstein, S.R., &amp; Celis, M. (2019). Catálogo de plantas y líquenes de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. http://catalogoplantasdecolombia.unal.edu.co</citation>
                <citation identifier="598">Rubiano, L. J. (1988). Líquenes como indicadores de contaminación en el complejo industrial de Betania y la termoeléctrica de Zipaquirá, Cundinamarca. Acta Biológica Colombiana, 1(4), 95–125.</citation>
                <citation identifier="601">Díaz Escandón, D., Soto Medina, E., Lücking, R., &amp; Silverstone Sopkin, P. A. (2016). Corticolous lichens as environmental indicators of natural sulphur emissions near the sulphur mine El Vinagre (Cauca, Colombia). Lichenologist, 48(2), 147–159. https://doi.org/10.1017/S0024282915000535</citation>
                <citation identifier="602">Booth, C. (1960) Studies on pyrenomycetes: V. Nomenclature of some fusaria in relation to their nectrioid perithecial states. Mycological Papers 74, 1–16.</citation>
                <citation identifier="603">Dennis, R. W. G. (1956). Some Xylarias of Tropical America. Kew Bulletin, 11(3), 401–444. http://www.jstor.org/stable/4109126</citation>
                <citation identifier="604">Döbbeler, P. (2007). Ascomycetes on Polytrichadelphus aristatus (Musci). Mycological Research, 111(12), 1406–1421. https://doi.org/10.1016/j.mycres.2007.08.006</citation>
                <citation identifier="606">Joyería Gastronómica (2020). Colección Quedate en Casa-Bogotá. Disponible en: http://larutagastro.com/wp-content/uploads/2020/07/Cata%CC%81logo-QEC_compressed.pdf. Consultado el 15 de Diciembre de 2020</citation>
                <citation identifier="608">Menú Restaurante Toshiro Robatayaki. Plato con Enoki-Restaurante Toshiro Robatayaki Cl. 90 #No 11-13 Local 5, Bogotá. Comunicación personal.</citation>
                <citation identifier="609">Pérez, A. C., &amp; Peroza, V. C. (2013). Micorrizas arbusculares asociadas al pasto angleton (Dichathium aristatum Benth) en fincas ganaderas del municipio de Tolú, Sucre-Colombia. Revista MVZ Cordoba, 18(1), 3362–3369. https://doi.org/10.21897/rmvz.199</citation>
                <citation identifier="610">Monroy, H. J., Salamanca, C. R., Cano, C., Moreno-Conn, L. M., &amp; Orduz-Rodríguez, J. O. (2013). Influencia de las coberturas en cultivos de cítricos sobre los hongos formadores de micorrizas arbusculares en Oxisoles del piedemonte llanero colombiano. Corpoica Cienc. Tecnol. Agropecu., 14, 53–65.</citation>
                <citation identifier="611">Cain, R. F. (1962). Studies of Coprophilous Ascomycetes: VIII. New species of Podospora. Canadian Journal of Botany, 40(5), 447–490. https://doi.org/10.1139/cjr50c-033</citation>
                <citation identifier="612">Moratto, C., Martínez, L. J., Valencia, H., &amp; Sánchez, J. (2005). Efecto del uso del suelo sobre hongos solubilizadores de fosfato y bacterias diazotróficas en el páramo de Guerrero (Cundinamarca). Agronomia Colombiana, 23(2), 299–309.</citation>
                <citation identifier="613">Dodd, J. C., Arias, I., Koomen, I., &amp; Hayman, D. S. (1990). The management of populations of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi in acid-infertile soils of a savanna ecosystem - II. The effects of pre-crops on the spore populations of native and introduced VAM-fungi. Plant and Soil, 122(2), 241–247. https://doi.org/10.1007/BF02851981</citation>
                <citation identifier="616">Petch, T. (1931). Notes on entomogenous fungi. Transactions of the British Mycological Society, 16 (1), 55–75</citation>
                <citation identifier="618">Samson, R. A. (1974). Paecilomyces and some allied hyphomycetes. Studies in Mycology, 6, 1–119.</citation>
                <citation identifier="619">Mata, J. L., &amp; Petersen, R. H. (2000). A new species of Lentinula (Agaricales) from Central America. Mycoscience, 41(4), 351–355. https://doi.org/10.1007/BF02463948</citation>
                <citation identifier="620">de Hoog, G. S., &amp; Smith, M. T. (2004). Ribosomal gene phylogeny and species delimitation in Geotrichum and its teleomorphs. Studies in Mycology, 50(50), 489–515. wos:000228300400020</citation>
                <citation identifier="621">Singer, R. (1976). Marasmieae (Basidiomycetes, Tricholomataceae). Flora Neotropica Monograph, 17, 1–34</citation>
                <citation identifier="622">Nicolson, T.H., &amp; Schenck, N.C. (1979). Endogonaceous mycorrhizal endophytes in Florida. Mycologia, 71, 178–198.</citation>
                <citation identifier="623">Walker, C. (1982). Species in the Endogonaceae: a new species (Glomus occultum) and a new combination (Glomus geosporum). Mycotaxon, 15, 49–61.</citation>
                <citation identifier="625">Chivers, A. H. (1915). A monograph of the genera Chaetomium and Ascotricha. Memoirs of the Torrey Botanical Club, 14(3), 155–240.</citation>
                <citation identifier="626">Fisher, F. E. (1950). Two new species of Hirsutella Patouillard. Mycologia, 42, 290–297.</citation>
                <citation identifier="627">Schenck N. C., &amp; Smith G. S. (1982). Additional new and unreported species of mycorrhizal fungi (Endogonaceae) from Florida. Mycologia, 74, 77–92</citation>
                <citation identifier="628">Tadych, M., &amp; Błaszkowski, J. (2000) Arbuscular fungi and mycorrhizae (Glomales) of the Slowiński National Park, Poland. Mycotaxon, 74 (2), 463–482.</citation>
                <citation identifier="631">Nguyen, N. H., Song, Z., Bates, S. T., Branco, S., Tedersoo, L., Menke, J., Schilling, J. S., &amp; Kennedy, P. G. (2016). FUNGuild: An open annotation tool for parsing fungal community datasets by ecological guild. Fungal Ecology, 20, 241–248. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2015.06.006. Disponible en: http://www.funguild.org/</citation>
                <citation identifier="632">Henao, L. G. (1997). Afiloforales de Colombia III: Amauroderma (Basidiomycetes: Ganodermataceae) en el Herbario Nacional Colombiano. Caldasia, 19(1–2), 131–143.</citation>
                <citation identifier="633">Henao, L. G. (1990). Notas sobre Afiloforales colombianos (Basidiomycetes: Aphyllophoralles) II. Caldasia, 16(77), 129–132.</citation>
                <citation identifier="634">Franco-Molano, A. E. (1993). Studies on Cystoderma: a new species and a new combination. Mycologia, 85, 672–676.</citation>
                <citation identifier="636">Tulloss, R. E., &amp; Franco-Molano, A.E. (2008) Studies in Amanita subsection Vittadiniae 1 - a new species from Colombian savanna. Mycotaxon, 105, 317–323</citation>
                <citation identifier="637">Montoya, S., Sanchez, O., &amp; Levin, L. (2014). Pudrición Blanca Evaluation of Endoglucanase , Exoglucanase, Laccase, and Lignin Peroxidase Activities on Ten White-Rot Fungi Avaliação De Atividades. Biotecnología En El Sector Agropecuario y Agroindustria, 12(2), 115–124. http://www.scielo.org.co/scielo.php?pid=S1692-35612014000200013&amp;script=sci_arttext&amp;tlng=es</citation>
                <citation identifier="638">Arboleda, C., Mejía, A. I., Franco-Molano, A. E., Jiménez, G. A., &amp; Penninckx, M. J. (2008). Autochthonous white rot fungi from the tropical forest of Colombia for dye decolourisation and ligninolytic enzymes production. Sydowia, 60(2), 165–180.</citation>
                <citation identifier="641">Davis, A. K., Barrett, F. S., May, D. G., Cosimano, M. P., Sepeda, N. D., Johnson, M. W., Finan, P. H., &amp; Griffiths, R. R. (2020). Effects of Psilocybin-Assisted Therapy on Major Depressive Disorder: A Randomized Clinical Trial. JAMA Psychiatry, 1–9. https://doi.org/10.1001/jamapsychiatry.2020.3285</citation>
          </bibliography>
          <dc:replaces>http://i2d.humboldt.org.co/resource?id=le_fungi_colombia_2021/v2.1.xml</dc:replaces>
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