Checklist

Lista de especies de Macromicetos útiles y no útiles de Colombia

Latest version published on 27 November 2024
I2D-BIO_2021_048. El recurso provee una lista de especies de 83 especies nativas de hongos de Colombia en inglés y en español, documentadas en el marco del proyecto “Plantas y hongos útiles de Colombia”. Estas fichas contienen información referente a la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de 83 especies, así como las referencias usadas para su construcción. Las fichas serán cargadas en el Catálogo de la Biodiversidad del SIB Colombia y la plataforma Colfungi.

Rights

Researchers should respect the following rights statement:

Libre a nivel interno y externo (Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0)

Data Records

The data in this checklist resource has been published as a Darwin Core Archive (DwC-A), which is a standardized format for sharing biodiversity data as a set of one or more data tables. The core data table contains 83 records.

1 extension data tables also exist. An extension record supplies extra information about a core record. The number of records in each extension data table is illustrated below.

  • Taxon (core)
    83
  • Distribution 
    83

This IPT archives the data and thus serves as the data repository. The data and resource metadata are available for download in the downloads section. The versions table lists other versions of the resource that have been made publicly available and allows tracking changes made to the resource over time.

Downloads

Download the latest version of this resource data as a Darwin Core Archive (DwC-A) or the resource metadata as EML or RTF:

Data as a DwC-A file download 83 records in Spanish (27 kB) - Update frequency: unknown
Metadata as an EML file download in Spanish (63 kB)
Metadata as an RTF file download in Spanish (58 kB)

Versions

The table below shows only published versions of the resource that are publicly accessible.

How to cite

Researchers should cite this work as follows:

Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2021). Lista de especies de Macromicetos útiles y no útiles de Colombia. 83 registros, aportados por: Torres, G. (Contacto del recurso), Peña-Cañón, R (Creador del recurso, Proveedor de metadatos y Autor).

Keywords

Ocurrencia; hongo útiles; hongos no útiles; Colombia; ; Inventorythematic; Checklist

Contacts

Who created the resource:

Ehidy Rocio Peña Cañón
Contratista
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Carrera 16 #32-31
150001 Tunja
Boyacá
CO
3133173647
https://orcid.org/0000-0001-5993-5247

Who can answer questions about the resource:

Germán Eduardo Torres Morales
Investigador Asistente, Ciencias Básicas de la Biodiversidad
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Avenida Circunvalar # 16 - 20
111311 Bogotá, D.C.
Cundinamarca
CO
132027671132

Who filled in the metadata:

Ehidy Rocio Peña Cañón
Contratista
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Carrera 16 #32-31
150001 Tunja
Boyacá
CO
3133173647
https://orcid.org/0000-0001-5993-5247

Who else was associated with the resource:

Custodian Steward
Infraestructura Institucional de Datos
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt
Calle 28A No. 15-09
111311 Bogotá, D.C.
Bogotá, D.C.
CO
3202767
http://www.humboldt.org.co
Point Of Contact
Germán Eduardo Torres Morales
Investigador Asistente, Ciencias Básicas de la Biodiversidad
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Avenida Circunvalar # 16 - 20
111311 Bogotá, D.C.
Bogotá, D.C.
CO
3218010557
http://www.humboldt.org.co
Author
Ehidy Rocio Peña Cañón
Contratista
Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Carrera 16 #32-31
150001 Tunja
Boyacá
CO
3133173647
https://orcid.org/0000-0001-5993-5247

Geographic Coverage

Lista de especies de hongos útiles y no útiles presentes en diferentes departamentos de Colombia. El listado incluye especies nativas y no nativas.

Bounding Coordinates South West [-4.16, -78.95], North East [12.33, -66.69]

Taxonomic Coverage

Del total de especies documentadas en las fichas, 80 especies pertenecen al filo Basidiomycota, con representantes de los órdenes Agaricales, Polyporales, Hymenochaetales, Boletales, Russulales, Cantharellales y Geastrales (organizados de aucerdo a la importancia en su representatividad). Asimismo, 3 especies del filo Ascomycota pertenecientes a los órdenes Hypocreales y Pezizales.

Family  Agaricaceae,  Amanitaceae,  Bolbitiaceae,  Boletaceae,  Boletinellaceae,  Callistosporiaceae,  Cantharellaceae,  Cortinariaceae,  Entolomataceae,  Geastraceae,  Hydnangiaceae,  Hygrophoraceae,  Hymenochaetaceae,  Hymenogastraceae,  Inocybaceae,  Irpicaceae,  Marasmiaceae,  Meruliaceae,  Mycenaceae,  Omphalotaceae,  Ophiocordycipitaceae,  Physalacriaceae,  Pleurotaceae,  Polyporaceae,  Psathyrellaceae,  Russulaceae,  Sarcoscyphaceae,  Strophariaceae,  Tricholomataceae

Temporal Coverage

Start Date / End Date 2021-07-19 / 2021-08-31

Project Data

No Description available

Title Plantas y Hongos útiles de Colombia
Funding Este trabajo es apoyado por un subsidio de Desarrollo Profesional y Compromiso a través del Fondo Newton-Caldas. El subsidio es financiado por el Departamento de Negocios, Energía y Estrategia Industrial del Reino Unido (BEIS) y el Ministerio de Ciencia, Tecnología e Innovación de Colombia (Minciencias), e implementado por el British Council.
Study Area Description Documentación de información sobre especies de hongos útiles y no útiles presentes en diferentes departamentos de Colombia.
Design Description El proyecto busca comprender, difundir y promover el uso sostenible de diferentes plantas y hongos en el país a través de cuatro paquetes de trabajo. El primero, recopilar información sobre plantas y hongos útiles de Colombia y presentarla a través de las plataformas de Kew como ColPlantA (www.colplanta.org) y ColFungi (www.colfungi.org) incluyendo información actualizada de muchas especies de plantas y hongos en Colombia. Estas plataformas son necesarias para identificar la taxonomía y atributos asociados de las especies, los cuales son fundamentales para desarrollar nuevos negocios verdes. En segundo lugar, se promueven los usos de plantas y hongos colombianos a una audiencia amplia. Un tercer eje de trabajo busca desarrollar una plataforma digital para una Red de Cadena de Valor (VCN) que facilite cadenas de valor sustentables usando la diversidad de plantas y hongos de Colombia, incentivando la conexión entre empresas, comunidades locales y clientes. Finalmente, el cuarto esquema de trabajo se aplicará el marco de la VCN en tres áreas piloto biodiversas de Colombia, para mejorar la seguridad alimentaria, la salud, el rango dietético y la prosperidad de las comunidades locales.

The personnel involved in the project:

Metadata Provider
Ehidy Rocio Peña

Sampling Methods

Para la elaboración de las fichas de especies de hongos útiles y no útiles de Colombia se diligenció un archivo en formato Excel siguiendo una modificación del estándar de información biológica DarwinCore. El estándar fue ajustado para incluir nuevas variables y reconciliar los parámetros necesarios para la publicación de la información en el portal ColFungi administrado por el Real Jardín Botánico de KEW y el SIB Colombia. La búsqueda de literatura se realizó utilizando las bases de datos como Google, ScienceDirect, Dialnet, SciELO, Scopus y PubMed; se consultaron los repositorios de diferentes universidades del país en la consulta de literatura gris como son las tesis de Pregrado, Maestría y Doctorado y también se llevó a cabo la consulta de material bibliográfico en físico como libros y/o capítulos de libros no disponibles en línea. Se documentó información sobre la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de las especies. En archivo en formato Excel y de gestor bibliográfico se relacionaron las referencias consultadas.

Study Extent Información sobre hongos útiles y no útiles reportadas en diversas Localidades, municipios y departamentos de Colombia.
Quality Control La revisión de categorías taxonómicas, sinonimias y autoría de los nombres científicos se siguió de acuerdo al Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp), que es un recurso comunitario actualmente coordinado y respaldado por el Real Jardín Botánico de Kew y representado por la Sección de Micología, el Landcare Research-NZ, representada por el Grupo de Micología, y el Instituto de Microbiología de la Academia China de Ciencias, actuando como los custodios. La información de las categorías de uso y modo de uso, así como la abundancia, ecosistema al cual está asociada la especie, el conocimiento de compuestos activos, su aprovechamiento, la capacidad de producción y los productos derivados de la especie se consultaron en información bibliográfica disponible como artículos de investigación, revisión, tesis de pregrado, maestría y doctorado, libros o capítulos de libros, páginas web, entre otras fuentes de información consultadas. Algunos datos de distribución fueron tomados del Servicio de Información sobre Diversidad Biológica Mundial (GBIF) disponible en https://www.gbif.org/. El estado de conservación de las especies fue consultado en la Iniciativa Global de Lista Roja de Hongos (http://iucn.ekoo.se/iucn/species_list/#tab-species-list-thumbs-assessment-published) y en la Lista Roja de la UICN (https://www.iucnredlist.org/search/list?query=fungi&searchType=species).

Method step description:

  1. Para la elaboración de las fichas de especies de hongos útiles y no útiles de Colombia se diligenció un archivo en formato Excel siguiendo una modificación del estándar de información biológica DarwinCore. El estándar fue ajustado para incluir nuevas variables y reconciliar los parámetros necesarios para la publicación de la información en el portal ColFungi administrado por el Real Jardín Botánico de KEW y el SIB Colombia. La búsqueda de literatura se realizó utilizando las bases de datos como Google, ScienceDirect, Dialnet, SciELO, Scopus y PubMed; se consultaron los repositorios de diferentes universidades del país en la consulta de literatura gris como son las tesis de Pregrado, Maestría y Doctorado y también se llevó a cabo la consulta de material bibliográfico en físico como libros y/o capítulos de libros no disponibles en línea. Se documentó información sobre la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de las especies. La revisión de categorías taxonómicas, sinonimias y autoría de los nombres científicos se siguió de acuerdo al Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp), que es un recurso comunitario actualmente coordinado y respaldado por el Real Jardín Botánico de Kew y representado por la Sección de Micología, el Landcare Research-NZ, representada por el Grupo de Micología, y el Instituto de Microbiología de la Academia China de Ciencias, actuando como los custodios. La información de las categorías de uso y modo de uso, así como la abundancia, ecosistema al cual está asociada la especie, el conocimiento de compuestos activos, su aprovechamiento, la capacidad de producción y los productos derivados de la especie se consultaron en información bibliográfica disponible como artículos de investigación, revisión, tesis de pregrado, maestría y doctorado, libros o capítulos de libros, páginas web, entre otras fuentes de información consultadas. Algunos datos de distribución fueron tomados del Servicio de Información sobre Diversidad Biológica Mundial (GBIF) disponible en https://www.gbif.org/. El estado de conservación de las especies fue consultado en la Iniciativa Global de Lista Roja de Hongos (http://iucn.ekoo.se/iucn/species_list/#tab-species-list-thumbs-assessment-published) y en la Lista Roja de la UICN (https://www.iucnredlist.org/search/list?query=fungi&searchType=species). En archivo en formato Excel y de gestor bibliográfico se relacionaron las referencias consultadas.

Bibliographic Citations

  1. Albino Smania, E. D. F. A., Delle Monache, F., Yunes, R. A., Paulert, R., & Smania, A. (2007). Antimicrobial activity of methyl australate from Ganoderma australe. Revista Brasileira de Farmacognosia, 17(1), 14–16. https://doi.org/10.1590/S0102-695X2007000100004 05
  2. Arboleda, C., Mejía, A. I., Franco-Molano, A. E., Jiménez, G. A., & Penninckx, M. J. (2008). Autochthonous white rot fungi from the tropical forest of Colombia for dye decolourisation and ligninolytic enzymes production. Sydowia, 60(2), 165–180. 07
  3. Bautista-Gonzalez, J.A., Moreno-Fuentes, A. (2014). Los hongos medicinales de México. Pp: 145–176. En: Moreno-Fuentes A, Garibay-Orijel R (eds). La Etnomicología en México. Estado del Arte-Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (CONACyT). México D. F.: Universidad Autonoma del Estado de Hidalgo- Instituto de Biología (UNAM)-Sociedad Mexicana de Micología-Asociación Etnobiológica Mexicana-Grupo Interdisciplinario para el desarrollo de la Etnomicología en México-Sociedad Latinoamericana de Etnobiología. 13
  4. Boa, E. (2004). Wild edible fungi: A global overview of their use and importance to people. Non-wood forest products 17. Roma, Italia: FAO. 149 p. 14
  5. Bolaños, A.C., Soto Medina, E. (2011) Macrohongos Comestibles y Medicinales Comunes en la Vegetación de la Universidad del Valle, Colombia. Revista de Ciencias, 15, 31–38. https://doi.org/10.25100/rc.v15i0.515 15
  6. Calonge, F. D., Mata, M., & Umaña, L. (2007). Macrocybe titans, un hongo espectacular presente en Costa Rica, América Central. Bull. Famm., N. S., 32, 21–24. 18
  7. Carreño-Ruiz, S. D., Cappello-García, S., Gaitán-Hernández, R., Cifuentes-Blanco, J., & Rosique-Gil, E. (2014). Growth of three tropical edible fungi in culture mediums and agricultural waste. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 5(8), 1447–1458. 20
  8. Franco-Molano, A. E., Vasco-Palacios, A.M., López-Quintero, C.A., & Boekhout, T. (2005) Macrohongos de la región del Medio Caquetá - Colombia: guía de campo. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquia. 211 p. 30
  9. Garibay-Orijel, R., & Ruan-Soto, F. (2014). Listado de los Hongos silvestres consumidos como alimento tradicional en México. En A. Moreno-Fuentes & R. Garibay-Orijel (Eds.), La Etnomicología en México. Estado del Arte. (pp. 91-109). Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (CONACyT). Universidad Autonoma del Estado de Hidalgo. Instituto de Biología (UNAM). Sociedad Mexicana de Micología. Asociación Etnobiológica Mexicana. Grupo Interdisciplinario para el desarrollo de la Etnomicología. 32
  10. Guzmán, G., & Varela, L. (1978). Los Hongos de Colombia III. Observaciones sobre los hongos, líquenes y mixomicetos de Colombia. Caldasia, 12(58), 309-338. 36
  11. Guzmán, G., Torres, M. G, Ramirez-Guillén, F., Ríos-Hurtado, A. (2004). Introducción al conocimiento de los Macromicetos del Chocó, Colombia. Revista Mexicana de Micología,19, 33-43. 37
  12. Milhorini, S. da S., Smiderle, F. R., Biscaia, S. M. P., Rosado, F. R., Trindade, E. S., & Iacomini, M. (2018). Fucogalactan from the giant mushroom Macrocybe titans inhibits melanoma cells migration. Carbohydrate Polymers, 190(February), 50–56. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2018.02.063 58
  13. Palacio, M., Gutiérrez, Y., Franco-Molano, A.E., & Callejas-Posada, R. (2015). Nuevos registros de macrohongos (Basidiomycota) para Colombia procedentes de un bosque seco tropical. Actualidades Biológicas, 37 (102), 319–339 70
  14. Peña-Cañón, E. R., & Henao-Mejía, L. G. (2014) Conocimiento y uso tradicional de hongos silvestres de las comunidades campesinas asociadas a bosques de roble (Quercus humboldtii) en la zona de influencia de la Laguna de Fúquene, Andes Nororientales. Etnobiología, 12, 28–40. 73
  15. Pulido, M. M. (1983). Estudios en Agaricales Colombianos. Los hongos de Colombia IX. (P. Ruiz Carranza & S. Díaz Piedrahita (eds.)). Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional. 79
  16. Sanjuan, T. (1999). La diversidad del género Cordyceps en hormigas del bosque húmedo tropical de Colombia. [Tesis de grado]. Universidad Nacional de Colombia. 89
  17. Stijve, T. (2004). The tropical giant mushroom Macrocybe titans is edible and can be cultivated. Antwerpse Mycologische Kring. AMK Mededelingen 3: 93–94. 98
  18. The Global Fungal Red List Initiative (2020). Disponible en: http://iucn.ekoo.se/en/iucn/welcome. Consultado en 08 Junio 2021 100
  19. Vasco-Palacios, A. M. (2002). Estudio etnobiológico de los hongos macromicetes entre los Uitoto de la region de Araracuara (Amazonía Colombiana). [Tesis de Pregrado]. Universidad Nacional de Colombia. 105
  20. Vasco-Palacios, A. M., Suaza, S. C., Castaño-Betancur, M., & Franco-Molano, A. E. (2008). Conocimiento etnoecólogico de los hongos entre los indígenas Uitoto, Muinane y Andoke de la Amazonía Colombiana. Acta Amazonica, 38(1), 17–28. https://doi.org/10.1590/S0044-59672008000100004 106
  21. Vasco-Palacios, A., & Franco-Molano, A. (2013). Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota-Basidiomycota). Mycotaxon, 121(1), 100–158. 107
  22. Wisniewski, A. C. (2009). Produção de Amilase e Glucoamilase por Macrocybe titans Cultivado em resíduos sólidos agroindustriais. [Tesis de Maestría no publicada]. Universidade Regioal de Blumeau. 113
  23. Wisniewski, A. C., Lopes De Almeida, M. Â., Palma, M. B., & Tavares, L. B. B. (2010). Produção de enzimas amilolíticas por Macrocybe titans em resíduo do processamento de cerveja. Revista Brasileira de Biociências, 8(3), 285–293. 114
  24. Zent, E. L., Zent, S., & Iturriaga, T. (2004). Knowledge and use of fungi by a mycophilic society of the Venezuelan Amazon. Economic Botany, 58(2), 214–226. https://doi.org/10.1663/0013-0001(2004)058[0214:KAUOFB]2.0.CO;2 122
  25. Zhang, J. J., Dong, Y., Qin, F.Y., Cheng, Y. (2019). Australeols A−F, neuroprotective meroterpenoids from Ganoderma australe. Fitoterapia 134, 250-255. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2019.02.021. 123
  26. Franco-Molano, A. E., Aldana, R., & Halling, R. (2000) Setas de Colombia. Guía de campo. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquía. 156 p. 127
  27. Franco-Molano, A.E., Corrales, A., & Vasco-Palacios, A. M. (2010) Macrohongos de Colombia II. Listado de especies de los ordenes Agaricales, Boletalles, Cantharelalles y Russulales (Agaricomycetes, Basidiocmycota). Actualidades Biológicas, 32, 89–113 128
  28. García Lemos, A., & Bolaños Rojas, A. C. (2011). Macrohongos presentes en el bosque seco tropical de la región del Valle del Cauca, Colombia. Revista de Ciencias, 14, 45–54. https://doi.org/10.25100/rc.v14i0.653 129
  29. Jiménez-Zárate, J., Garibay-Orijel, R., Yahia, E. M., Esquivel-Naranjo, E. U., Arellano-Carbajal, F., & Landeros, F. (2020). Primer registro de la comestibilidad de Phillipsia domingensis Berk. (Pezizales: Ascomycota): aspectos nutricionales y actividad biológica. Scientia Fungorum, 50, e1254. https://doi.org/10.33885/sf.2020.50.1254 133
  30. Lombana-Álvarez, P., Monterroza-Álvarez, J. A., Chamorro-Quiroz, L. F., Franco-Molano, A. E., & Payares-Díaz, I. R. (2016). Nuevos registros de macromicetos para Colombia. Actual Biol, 38(105), 181-189. https://doi.org/10.17533/udea.acbi.v38n105a05 135
  31. Soto-Medina E., & Bolaño Rojas, A. (2013). Hongos macroscópicos en un bosque de niebla intervenido, vereda Chicoral, Valle del Cauca, Colombia. Biota Colombiana, 14 (2), 1-12. 137
  32. Vasco-Palacios, A. M. (2006). Acervo etnomicológico en la región del medio Caquetá. Concepción y uso de los hongos por los indígenas Muinane, Andoke y uitoto. [Tesis de Maestría]. Universidad de Antioquia, Medellín. 143 p. 141
  33. Singer, R. (1963). OAK MYCORRHIZA FUNGI IN COLOMBIAV. Mycopathol. et Mycol. Appl., 20, 239-252. 143
  34. Montoya, A. F., Arias, D. F., & Betancur Agudelo, M. (2005). Contribución al conocimiento de los hongos macromicetos del resguardo indigena nuestra señora de la candelaria de la montaña Riosucio - Caldas. Boletín Científico (Centro de Museos) Museo de Historia Natural, 9, 19-30. 144
  35. Betancur Agudelo, M., Calderón H., M., Betancourt G., Ó., & Sucerquia Gallego, Á. (2007). Hongos Macromycetes en dos relictos de Bosque Húmedo Tropical Montano Bajo de la vereda La Cuchilla, Marmato, Caldas. Boletín Científico - Centro de Museos - Museo de Historia Natural, 11(enero-diciembre), 19-31. 145
  36. Peña-Venegas, C. P., & Vasco-Palacios, A. M. (2019). Endo- and Ectomycorrhizas in Tropical Ecosystems of Colombia. En M. C. Pagano & M. A. Lugo (Eds.), Mycorrhizal Fungi in South America (Fungal Bio, pp. 111-146). Springer Nature. https://doi.org/https://doi.org/10.1007/978-3-030-15228-4_6 145
  37. Sanjuan, T. I., Franco-molano, A. E., Kepler, R. M., Spatafora, J. W., Tabima, J., Vasco-Palacios, A. M., & Restrepo, S. (2015). Five new species of entomopathogenic fungi from the Amazon and evolution of neotropical Ophiocordyceps. Fungal Biology, 119(10), 901-916. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2015.06.010.This 147
  38. Vasco-Palacios, A. M., López-Quintero, C., Franco-Molano, A. E., & Boekhout, T. (2014). Austroboletus amazonicus sp. nov. and Fistulinella campinaranae var. scrobiculata, two commonly occurring boletes from a forest dominated by Pseudomonotes tropenbosii (Dipterocarpaceae) in Colombian Amazonia. Mycologia, 106(5), 1004-1014. https://doi.org/10.3852/13-324 148
  39. Wartchow, F., & Maia, L. C. (2007). The Neotropical Amanita crebresulcata Bas : new citation from Northeast Brazil. Hoehnea, 34(2), 131-134. 149
  40. Vargas, N., Pardo-de La Hoz, C. J., Danies, G., Franco-Molano, A. E., Jiménez, P., Restrepo, S., & Grajales, A. (2017). Defining the phylogenetic position of Amanita species from Andean Colombia. Mycologia, 109(2), 261-276. https://doi.org/10.1080/00275514.2017.1309631 150
  41. Castiblanco-Z., A., Pinzón-O., C. A., & Pinzón-O., J. (2017). Primer Registro de Hydnopolyporus fimbriatus (Cooke) D. A. Reid (Polyporales: Meripilaceae) para el departamento de Cundinamarca, Colombia. Bol. Cient. Mus. Hist. Nat. U. de Caldas, 21(2), 30-37. https://doi.org/10.17151/bccm.2017.21.2.2 151
  42. Putzke, J., Henao-Mejía, L. G., Peña-Cañón, R., Niño-Fernández, Y., & Chivatá-Bedoya, T. (2020). New citations to the agaricobiota (Fungi-Basidiomycota) in oak forests of the Northeastern Andes of Colombia. Hoehnea, 47(e422019), 2-9. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1590/2236-8906-42/2019 152
  43. Kittakoop, P., Punya, J., Kongsaeree, P., Lertwerawat, Y., Jintasirikul, A., Tanticharoen, M., & Thebtaranonth, Y. (1999). Bioactive naphthoquinones from Cordyceps unilateralis. Phytochemistry, 52, 453-457. 153
  44. Vargas, N., & Restrepo, S. (2020). A Checklist of Ectomycorrhizal Mushrooms Associated with Quercus humboldtii in Colombia. En J. Pérez-Moreno, A. Guerin-Laguette, R. Flores Arzú, F.-Q. Yu, & Mushrooms (Eds.), Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World: Perspectives from Ecological, Agricultural and Social Sciences (pp. 425-450). Springer Nature. https://doi.org/https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8 154
  45. Pinzón-Osorio, C. A., & Pinzón-Osorio, J. (2016). Primer reporte de Entoloma hochstetteri (Entolomataceae, Agaricales, Basidiomycota) para el departamento de Santander, Colombia. Rev. Biodivers. Neotrop., 6(2), 126-130. https://doi.org/10.18636/bioneotropical.v6i2.181 155
  46. Vasco-Palacios, A. M., Franco-Molano, E., López-Quintero, C. A., & Boekhout, T. (2005). Macromycetes (Ascomycota, Basidiomycota) de la región del medio Caquetá, departamentos de Caquetá y Amazonas (Colombia). Biota Colombiana, 6(1), 127–140. 156
  47. Vasco-Palacios, A. M. (2016). Ectomycorrhizal fungi in Amazonian tropical forests in Colombia. Fundación Biodiversa Colombia. 205 p. 157
  48. Franco-Molano, A. E., Corrales, A., & Vasco-Palacios, A. M. (2010). Macrohongos de Colombia II. Listado de especies de Los órdenes Agaricales, Boletales, Cantharellales y Russulales (Agaricomycetes, Basidiomycota). Actual Biol, 32(92), 89-114. 158
  49. Singer, R. (1974). A Monograph of Favolaschia (First Edit). Verlag Von J. Cramer. 108 p. 159
  50. Vargas, N., & Restrepo, S. (2019). Macrohongos (Basidiomycota y Ascomycota) de los ecosistemas exocársticos de El Peñón (Andes), Santander, Colombia. En C. A. Lasso, J. C. Barriga, & J. Fernández-Auderset (Eds.), Biodiversidad subterránea y epigea de los sistemas cársticos de El Peñón (Andes), Santander, Colombia. Serie Editorial Fauna Silvestre Neotropical. (Volumen VII, pp. 315-353). Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 160
  51. Vasco-Palacios, A. M., Zuluaga, M., Benjumea, C., Corrales, A., Niño Fernandez, Y. M., Peña- Cañón, R., & Vargas-Estupiñan, N. (2020). Gloiocephala quercetorum (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020, e.T174799623A179542965. https://doi.org10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T174799623A179542965 161
  52. Hydnopolyporus fimbriatus (Cooke) D.A.Reid in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset. https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-12. 162
  53. López R., A., & García A., J. (2011). Hydnopolyporus fimbriatus. Funga Veracruzana, 125(Mayo), 1-4. 163
  54. Hygroaster nodulisporus (Dennis) Singer in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-12. 164
  55. Sato, H., Ohta, R., & Murakami, N. (2020). Molecular prospecting for cryptic species of the Hypholoma fasciculare complex : toward the effective and practical delimitation of cryptic macrofungal species. Scientific Reports, 10(13224), 1-13. https://doi.org/10.1038/s41598-020-70166-z 165
  56. Peña-Cañón, E. R. (2021). Producto 3: “Proyecto de Plantas y hongos útiles” Informe de la salida de campo al municipio de Otanche (Boyacá). Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt. 18 p. 166
  57. Campi, M., Mancuello, C., Maubet, Y., & Niveiro, N. (2017). Laccaria fraterna (Cooke & Mass .: Sacc.) Pegler, 1965 (Agaricales , Basidiomycota) associated with exotic Eucalyptus sp . in northern Argentina and Paraguay. Check List, 13(4), 87-90. https://doi.org/https://doi.org/10.15560/13.4.87 167
  58. Laccaria fraterna (Sacc.) Pegler in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-12. 168
  59. Rosero-Lasprilla. L., Peña-Cañón, E. R., & Niño Fernandez, Y. M. (2021). Registro de plantas y hongos en el marco del proyecto: Valoración de servicios ecosistémicos a partir de componentes esenciales para la biodiversidad Norandina en Boyacá. v1.0. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/nobfla 169
  60. Leiotrametes menziesii (Berk.) Welti & Courtec. in GBIF Secretariat. (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset. accessed via GBIF.org on. 170
  61. De Boer, W., Folman, L. B., Klein Gunnewiek, P. J. A., Svensson, T., Bastviken, D., Öberg, G., Del Rio, J. C., & Boddy, L. (2010). Mechanism of antibacterial activity of the white- rot fungus Hypholoma fasciculare colonizing wood. Can. J. Microbiol., 56, 380-388. https://doi.org/10.1139/W10-023 171
  62. Anithachristy, S. A., Arunmani, M., & Sitther, V. (2014). Rock Phosphate Solubilization using Oxalic Acid - secreting Laccaria fraterna. Indian Journal of Bioinformatics and Biotechnology, 3(1), 16–21. http://ijbb.informaticspublishing.com/index.php/ijbb/article/view/46207 172
  63. Welti, S., Moreau, P., Favel, A., Courtecuisse, R., Haon, M., Navarro, D., Taussac, S., & Lesage-Meessen, L. (2012). Molecular phylogeny of Trametes and related genera, and description of a new genus Leiotrametes. Fungal Diversity, 55, 47-64. https://doi.org/10.1007/s13225-011-0149-2 173
  64. Yaling, L., Pongnak, W., & Kasem, S. (2014). Mushroom and macrofungi collection for screening bioactivity of some species to inhibit coffee antharcnose caused by Colletotrichum coffeanum. Journal of Agricultural Technology, 10(4), 845-861. 174
  65. Capello-García, S., Rosique Gíl, E., & Cifuentes-Blanco, J. (2013). Guia de hongos macroscópicos del Parque Estatal Agua Blanca (F. Morales Hoil (Ed.); Primera Ed). Universidad Juárez Autónoma de Tabasco. 175
  66. Putzke, J.(2014). Cogumelos no Sul do Brasil. Vol 1. Casa das Letras Editora. 100 p. 176
  67. Vargas, N., Bernal, A., Sarria, V., Franco-Molano, A., & Restrepo, S. (2011). Amatoxin and phallotoxin composition in species of the genus Amanita in Colombia: A taxonomic perspective. Toxicon, 58(6-7), 583-590. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2011.09.005 177
  68. MyCoPortal (2021). Mycology Collections data Portal. Recuperado de: http://mycoportal.org/portal/index.php. Consultado en 20 de Agosto 2021. 178
  69. Vargas-Estupiñan, N., Calle, A., Drechsler-Santos, E.R., Kossmann, T., da Cunha, K.M., Sandoval-Leiva, P., Torres, D. & Vasco-Palacios, A.M. 2020. Amanita fuligineodisca (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020: e.T172678109A179541167. https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T172678109A179541167.en 179
  70. Vasco-Palacios, A. M., Hernandez, J., Peñuela-Mora, M. C., Franco-Molano, A. E., & Boekhout, T. (2018). Ectomycorrhizal fungi diversity in a white sand forest in western Amazonia. Fungal Ecology, 31, 9-18. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2017.10.003 180
  71. Tavassoli, M., Afshari, A., Arsene, A. L., Mégarbane, B., Dumanov, J., Bastos Paoliello, M. M., Tsatsakis, A., Carvalho, F., Hashemzaei, M., Karimi, G., & Rezaee, R. (2019). Toxicological profile of Amanita virosa – A narrative review. Toxicology Reports, 6, 143-150. https://doi.org/10.1016/j.toxrep.2019.01.002 181
  72. Wartchow, F., Cortez, V. G., & Cavalcanti Q., M. A. (2015). Studies on Amanita (Amanitaceae) in Brazil: the discovery of A. aureofloccosa in the Brazil. Revista Brasileira de Botanica, 38(3), 639-643. https://doi.org/10.1007/s40415-015-0161-y 182
  73. Dijk, H. van, Onguene, N. A., & Kuyper, T. W. (2003). Knowledge and utilization of edible mushrooms by local populations of the rain forest of South Cameroon. AMBIO: A Journal of the Human Environment, 32(1), 19-23. https://doi.org/10.1579/0044-7447-32.1.19 183
  74. Vasco-Palacios, A.M., Calle, A., Drechsler-Santos, E.R., Kossmann, T., da Cunha, K.M. & TEHO Group. 2020. Austroboletus amazonicus (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020: e.T75098759A179542191. https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T75098759A179542191.en  184
  75. Yaseen, T., Khan, M., Shakeel, M., & Ara, H. (2016). Morphological study of edible and non- edible mushrooms , district Swabi, Khyber Pakhtunkhwa, Pakistan. Pure and Applied Biology, 5(4), 889-894. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.19045/bspab.2016.50112 185
  76. Hadibarata, T., & Yuniarto, A. (2020). Biodegradation of polycyclic aromatic hydrocarbons by high - laccase basidiomycetes fungi isolated from tropical forest of Borneo. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 28(101717), 1-8. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101717 186
  77. Collybia nivea (Mont.) Dennis in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-17. 187
  78. Wannathes N., Desjardin D.E., Retnowati A., Tan Y.S., Lumyong S. 2004. A redescription of Marasmius pellucidus, a species widespread in South Asia. Fungal Diversity, 17: 203-218. 188
  79. Ryvarden, L., & Johansen, I. 1980. A preliminary polypore flora of East Africa. Oslo: Fungiflora. p. 636. 189
  80. Zhuk, T. S., Skorobohatko, O. S., Albuquerque, W., & Zorn. H. (2021). Scope and limitations of biocatalytic carbonyl reduction with white-rot fungi. Bioorganic Chemistry, (108). https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2021.104651 190
  81. Vasco-Palacios, A. M., Lucio-Robledo, G., & Ryvarden, L. (2016). Synopsis of Coltricia and Coltriciella in the Neotropics, new species from Amazonian ecosystems in Colombia. En A. Vasco-Palacios (Ed.), Ectomycorrhizal fungi in Amazonian tropical forests in Colombia (pp. 124-141). Fundación Biodiversa Colombia. 191
  82. Tedersoo, L., Suvi, T., Beaver, K., Saar, I., (2007). Ectomycorrhizas of Coltricia and Coltriciella (Hymenochaetales, Basidiomycete) on Caesalpiniaceae, Dipterocarpaceae and Myrtaceae in Seychelles. Mycological progress, 6, 101–107. 192
  83. Flores-Arzú, R. (2020). Diversity and importance of edible ectomycorrhizal fungi in Guatemala. En: Pérez-Moreno, J., Guerin-Laguette, A., Flores Arzú, R., & Yu, F.-Q. (Eds.). Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World. Springer, Cham. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_4 196
  84. Singer, R. (1976). Flora Neotropica. Monograph No. 17. Marasmieae (Basidiomycetes-Tricholomatceae). The New York Botanicla Garden. 197
  85. Ruan-Soto, F., Cifuentes, J., Pérez-Ramírez, L., Ordaz-Velázquez, M., & Caballero, J. (2021). Hongos macroscópicos de interés cultural en los Altos de Chiapas y la selva Lacandona, México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 92, e923525. https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2021.92.3525 198
  86. Pegler, D. N. (1983). Agaric flora of the Lesser Antilles. Kew bulletin additional series IX. Royal Botanic Gardens, Kew. 668 p. 199
  87. Santana, V. F. (2015). Potencial antibacteriano de Agaricomycetes coletados no Nordeste do Brasil. [Universidade Federal de Pernambuco]. https://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/25283 200
  88. Ohtsuka, S., Ueno, S., Yoshikumi, C., Hirose, F., Ohmura, Y., Wada, T., Fujii, T., & Takahashi, E. (2006). Polysaccharides having an anticarcinogenic effect and a method of producing them from species of Basidiomycetes UK Patent. 201
  89. Aldana-Gómez, Ruth & Ana E. Franco-Molano. (2001). A new species of Gloiocephala from Colombia. Mycotaxon 80: 447-452. 202
  90. Sierra-Toro, J.D., González, J.A. & Sáenz, M.S. 2011. Registro preliminar de macrohongos (Ascomycetes y Basidiomycetes) en el bosque húmedo montano del alto el romeral (municipio de Angelópolis, departamento de Antioquia-Colombia). Revista Facultad Nacional de Agronomía 64(2): 6159-6174. 203
  91. Adhikari, M. K. (2014). Addition and correction to the knowledge on edibility of wild mushrooms in Nepal: a discussion. En Bulletin of Department of Plant Resources (Vol. 36, pp. 1-15). Department of Plant Resources. 204
  92. Sum, W. C., Indieka, S. A., & Matasyoh, J. C. (2019). Antimicrobial activity of Basidiomycetes fungi isolated from a Kenyan tropical forest. African Journal of Biotechnology, 18(5), 112-123. https://doi.org/10.5897/AJB2018.16660 205
  93. Nicholas, G. M. (1998). Australasian fungi: a natural product study. [Tesis de Doctorado]. Departamento de Química, University of Canterbury. 193 p. 206
  94. Ullah, M. A., Camacho, R., Evans, C. S., & Hedger, J. N. (2002). Production of Ligninolytic Enzymes by Species Assemblages of Tropical Higher Fungi from Ecuador. En R. Watling, J. C. Frankland, A. M. Ainsworth, S. Isaac, & C. H. Robinson (Eds.), Tropical mycology: Volume 1 Macromycetes (pp. 101-112). CAB International. https://doi.org/10.1079/9780851995427.0131 208
  95. López, A., & García A., J. (2012). Favolaschia cinnabarina. Funga Veracruzana, 135(September), 1-6. 209
  96. Gillen, K., Læssøe, T., Kirschner, R., & Piepenbring, M. (2013). Favolaschia species (Agaricales , Basidiomycota) from Ecuador and Panama. Nova Hedwigia, 96(1-2), 117-165. https://doi.org/10.1127/0029-5035/2012/0070 210
  97. Puccinelli, C., & Capelari, M. (2009). Marasmius (Basidiomycota - Marasmiaceae) do Parque Estadual das Fontes do Ipiranga, São Paulo, SP, Brasil: l: seção Sicci. Hoehnea, 36(4), 637-655. 211
  98. Retnowati, A. (2018). The species of Marasmiellus (Agaricales: Omphalotaceae) from Java and Bali. Gardens’ Bulletin Singapore, 70(1), 191-258. https://doi.org/10.26492/gbs70(1).2018-17 212
  99. Rother Somenzi, M., & Borges da Silveira, R. M. (2009). Leucocoprinus Pat . (Agaricaceae , Basidiomycota ) no Parque Estadual de Itapuã , Viamão, R, Brasil. Acta bot. bras., 23(3), 720-728. 213
  100. Corrales, A., Sanchez Tello, J. D., Benjumea, C., Peña-Cañón, R., Sanjuan, T., Vargas- Estupiñan, N., & Vasco-Palacios, A. M. (2020). Leccinum andinum (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020, e.T174799474A179539177. https://doi.org/https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T174799474A179539177.en 214
  101. Serrano Añazco, Y. D. L. (2016). Diversidad de hongos entomopatógenos del género Cordyceps s.l. (Hypocreales: Clavicipitaceae) en el Ecuador. [Pontificia Universidad Católica del Ecuador]. http://repositorio.puce.edu.ec/handle/22000/11022 216
  102. Valenzuela, R., Raymundo, T., Decock, C., & Esqueda, M. (2012). Aphyllophoroid fungi from Sonora, México 2. New records from Sierra de Álamos-Río Cuchujaqui Biosphere Reserve. Mycotaxon, 122, 51-59. https://doi.org/10.5248/122.51 217
  103. Milenge Kamalebo, H., & De Kesel, A. (2020). Wild edible ectomycorrhizal fungi: An underutilized food resource from the rainforests of Tshopo province (Democratic Republic of the Congo). Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine, 16(8), 1-13. https://doi.org/10.1186/s13002-020-0357-5 218
  104. Evans, H. C., Araújo, J. P. M., Halfeld, V. R., & Hughes, D. P. (2018). Epitypification and re-description of the zombie-ant fungus, Ophiocordyceps unilateralis (Ophiocordycipitaceae). Fungal Systematics and Evolution, 1(June), 13-22. https://doi.org/10.3114/fuse.2018.01.02 219
  105. Smith, A.H.; Singer, R. 1964. A monograph of the genus Galerina Earle. New York: Hafner Publishing Co. 384 p. 220
  106. Ruan-Soto, J. F., Pérez-Ramírez, L., Cifuentes, J., Ordaz Velázquez, M., Cruz Solís, A., García del Valle, Y., Reyes Escutia, F. de J., & Mariaca Méndez, R. (2017). Hongos de los lacandones de Naha y Metzabok: guía ilustrada de macromicetos (Primera Ed). Red temática de Patrimonio Biocultural CONACYT-ECOSUR-CONANP-Sociedad Mexicana de Micología-GIDEM A.C. http://patrimoniobiocultural.com/archivos/publicaciones/libros/GUIA ILUSTRADA DE MACROMICETOS.pdf 222
  107. Kuhar, F., Castiglia, V., & Papinutti, L. (2012). Geastrum species of the la Rioja province, Argentina. Mycotaxon, 122, 145-156. https://doi.org/10.5248/122.145 223
  108. Souza, H. Q., & Aguiar, I. (2004). Diversidade de Agaricales (Basidiomycota) na Reserva Biológica Walter Egler, Amazonas, Brasil. Acta Amazonica, 34(1), 43-51. https://doi.org/10.1590/s0044-59672004000100006 225
  109. Rout, Y., Behera, F., Kumar, S., Sahoo, M. P., & Devi, R. S. (2020). Mushroom Diversity of Dhenkanal District, Odisha, India: Source of Alternative Foods and Medicines. European Journal of Medicinal Plants, 31(7), 33-41. https://doi.org/10.9734/EJMP/2020/v31i730252 226
  110. Sanjuan, T., Amat, G., & Heano, L. G. (2001). Anamorfos y cepas del hongo entomopatógeno Cordyces en hormigas del bosque húmedo tropical del piedemonte putumayense. Revista Colombiana de Entomología, 27(1-2), 79-86. 227
  111. Phlebopus beniensis (Singer & Digilio) Heinem. & Rammeloo in GBIF Secretariat. (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset . accessed via GBIF.org. on 2021-08-24. 228
  112. Ameri, A., Vaidya, J. G., & Deokule, S. S. (2011). In vitro evaluation of anti-staphylococcal activity of Ganoderma lucidum , Ganoderma praelongum and Ganoderma resinaceum from Pune, India. African Journal of Microbiology Research, 5(3), 328-333. https://doi.org/10.5897/AJMR11.070 229
  113. Tanruean, K., Chandet, N., & Rakariyatham, N. (2013). Bioconversion of Ferulic Acid into High Value Metabolites by White Rot Fungi Isolated from Fruiting-Body of the Polypore Mushroom. Journal of Medical and Bioengineering, 2(3), 168-172. https://doi.org/10.12720/jomb.2.3.168-172 230
  114. Arana-Cuenca, A., Roda, A., Téllez, A., Loera, O., Carbajo, J. M., Terrón, M. C., & González, A. E. (2004). Comparative analysis of laccase-isozymes patterns of several related Polyporaceae species under different culture conditions. Journal of Basic Microbiology, 44(2), 79-87. https://doi.org/10.1002/jobm.200310324 231
  115. Ramesh, C., & Pattar, M. G. (2010). Antimicrobial properties, antioxidant activity and bioactive compounds from six wild edible mushrooms of western ghats of Karnataka, India. Pharmacognosy Research, 2(2), 107-112. https://doi.org/10.4103/0974-8490.62953 232
  116. Jiménez Ruiz, M., Pérez-Moreno, J., Almaraz-Suárez, J. J., & Torres-Aquino, M. (2013). Hongos silvestres con potencial nutricional, medicinal y biotecnológico comercializados en Valles Centrales, Oaxaca. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 4(2), 199-213. 233
  117. Daou, M., Farfan Soto, C., Majira, A., Cézard, L., Cottyn, B., Pion, F., Navarro, D., Oliveira Correia, L., Drula, E., Record, E., Raouche, S., Baumberger, S., & Faulds, C. B. (2021). Fungal treatment for the valorization of technical soda lignin. Journal of Fungi, 7(39), 1-21. https://doi.org/10.3390/jof7010039 234
  118. Peng, X.-R., Liu, J.-Q., Han, Z.-H., Yuan, X.-X., Luo, H.-R., & Qiu, M.-H. (2013). Protective effects of triterpenoids from Ganoderma resinaceum on H2O2-induced toxicity in HepG2 cells. Food Chemistry, 141(2), 920-926. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.03.071 235
  119. Sarikurkcu, C., Yildiz, D., Akata, I., & Tepe, B. (2021). Evaluation of the metal concentrations of wild mushroom species with their health risk assessments. Environmental Science and Pollution Research, 28, 21437-21454. https://doi.org/10.1007/s11356-020-11685-0 236
  120. Rosa, L. H., Machado Gomes, K. M., Jacob, C. C., Capelari, M., Rosa, C. A., & Zani, C. L. (2003). Screening of Brazilian Basidiomycetes for Antimicrobial Activity. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 98(7), 967-974. 237
  121. Alves, M. J., Ferreira, I. F. R., Dias, J., Teixeira, V., Martins, A., & Pintado, M. (2012). A review on antimicrobial activity of mushroom (Basidiomycetes) extracts and isolated compounds. En Planta Med (Vol. 78, Número 16, pp. 1707-1718). https://doi.org/10.1055/s-0032-1315370 238
  122. Contato-Graça, A., Brugnari, T., Ames Sibin, A. P., dos Reis Buzzo, A. J., Babeto de Sá-Nakanishi, A., Bracht, L., Bersani-Amado, C. A., Peralta, R. M., & Marques de Souza, C. G. (2020). Biochemical Properties and Effects on Mitochondrial Respiration of Aqueous Extracts of Basidiomycete Mushrooms. Cell Biochemistry and Biophysics, 78, 111-119. https://doi.org/10.1007/s12013-020-00901-w 239
  123. Khaund, P., & Joshi, S. R. (2013). Wild edible macrofungal species consumed by the Khasi tribe of Meghalaya, India. Indian Journal of Natural Products and Resources, 4(2), 197-204. 240
  124. Khaund, P., & Joshi, S. R. (2014). Enzymatic Profiling of Wild Edible Mushrooms Consumed by the Ethnic Tribes of India. J Korean Soc Appl Biol Chem, 57(2), 263-271. https://doi.org/10.1007/s13765-013-4225-z 241
  125. Gaire, S.-P., Zhou, X.-G., & Jo, Y.-K. (2021). Sterile White Basidiomycete Fungus Marasmius graminum: A New Pathogen causing Seedling Blight in Rice. Plant Disease, 105(3), 702. https://doi.org/10.1094/PDIS-05-20-1136-PDN 242
  126. Ren, P., Wang, J., Miao, X., Zhu, W., Wu, Y., Li, Y., Gao, K., & Yang, Y. (2021). ( ± ) -Pabmaragramin, a scalemic meroterpenoid produced by Marasmius graminum via precursor-assisted biosynthesis. Tetrahedron Letters, 63(19), 152715. https://doi.org/10.1016/j.tetlet.2020.152715 243
  127. Aubrecht, G., Huber, W., & Weissenhofer, A. (2013). Coincidence or benefit ? The use of Marasmius (horse-hair fungus) filaments in bird nests. AVIAN BIOLOGY RESEARCH, 6(1), 26-31. https://doi.org/10.3184/175815512X13531739538638 244
  128. Rosenberger, M. (2018). Atividade antimicrobiana de cogumelos (Agaricales) nativos da Floresta Estacional do oeste do Paraná [Universidade Federal do Paraná]. https://acervodigital.ufpr.br/handle/1884/56084 245
  129. Freymann, B. P. (2007). Physical properties of fungal rhizomorphs of marasmioid basidiomycetes used as nesting material by birds. Ibis., 150(2), 395-399. https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1474-919X.2007.00750.x 246
  130. Landinez-Torres, A., Panelli, S., Picco, A. M., Comandatore, F., Tosi, S., & Capelli, E. (2019). A meta-barcoding analysis of soil mycobiota of the upper Andean Colombian agro-environment. Scientific Reports, 9(10085), 1-12. https://doi.org/10.1038/s41598-019-46485-1 247

Additional Metadata

Existen documentos asociados al recurso que fueron incorporados a los productos entregados durante el mes de agosto como informe final de actividades.

Purpose Ampliar la búsqueda, sistematización y estandarización de la información sobre la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de 83 especies de hongos útiles y no útiles de Colombia. Así como contribuir con información para el Catálogo de la Biodiversidad del SIB Colombia y la plataforma Colfungi.
Alternative Identifiers http://i2d.humboldt.org.co/resource?r=le_fungi_chocesboy_2021