Lista de especies de Macromicetos útiles y no útiles de Colombia

Ehidy Rocio Peña Cañón1, Infraestructura Institucional de Datos2, Germán Eduardo Torres Morales3

1 Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, Carrera 16 #32-31, 150001, Tunja, Colombia; 2 Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt, Calle 28A No. 15-09, 111311, Bogotá, D.C., Colombia; 3 Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, Avenida Circunvalar # 16 - 20, 111311, Bogotá, D.C., Colombia

Corresponding author(s): Ehidy Rocio Peña Cañón (erociopc@hotmail.com)

Received {date}; Revised {date}; Accepted {date}; Published {date}

Citation: Combination of authors, year of data paper publication (in parentheses), Title, Journal Name, Volume, Issue number (in parentheses), and doi of the data paper.

Resource Citation

Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2021). Lista de especies de Macromicetos útiles y no útiles de Colombia. 83 registros, aportados por: Torres, G. (Contacto del recurso), Peña-Cañón, R (Creador del recurso, Proveedor de metadatos y Autor). http://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=le_fungi_chocesboy_2021

Abstract

I2D-BIO_2021_048.
El recurso provee una lista de especies de 83 especies nativas de hongos de Colombia en inglés y en español, documentadas en el marco del proyecto “Plantas y hongos útiles de Colombia”. Estas fichas contienen información referente a la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de 83 especies, así como las referencias usadas para su construcción. Las fichas serán cargadas en el Catálogo de la Biodiversidad del SIB Colombia y la plataforma Colfungi.

Keywords: Ocurrencia, hongo útiles, hongos no útiles, Colombia, , Inventorythematic, Checklist

General description

Purpose: Ampliar la búsqueda, sistematización y estandarización de la información sobre la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de 83 especies de hongos útiles y no útiles de Colombia. Así como contribuir con información para el Catálogo de la Biodiversidad del SIB Colombia y la plataforma Colfungi.
Additional information: Existen documentos asociados al recurso que fueron incorporados a los productos entregados durante el mes de agosto como informe final de actividades.

Project details

Project title: Plantas y Hongos útiles de Colombia
Personnel: Ehidy Rocio Peña
Funding: Este trabajo es apoyado por un subsidio de Desarrollo Profesional y Compromiso a través del Fondo Newton-Caldas.  El subsidio es financiado por el Departamento de Negocios, Energía y Estrategia Industrial del Reino Unido (BEIS) y el Ministerio de Ciencia, Tecnología e Innovación de Colombia (Minciencias), e implementado por el British Council.
Study area descriptions/descriptor: Documentación de información sobre especies de hongos útiles y no útiles presentes en diferentes departamentos de Colombia.
Design description: El proyecto busca comprender, difundir y promover el uso sostenible de diferentes plantas y hongos en el país a través de cuatro paquetes de trabajo. El primero, recopilar información sobre plantas y hongos útiles de Colombia y presentarla a través de las plataformas de Kew como ColPlantA (www.colplanta.org) y ColFungi (www.colfungi.org) incluyendo información actualizada de muchas especies de plantas y hongos en Colombia. Estas plataformas son necesarias para identificar la taxonomía y atributos asociados de las especies, los cuales son fundamentales para desarrollar nuevos negocios verdes. En segundo lugar, se promueven los usos de plantas y hongos colombianos a una audiencia amplia. Un tercer eje de trabajo busca desarrollar una plataforma digital para una Red de Cadena de Valor (VCN) que facilite cadenas de valor sustentables usando la diversidad de plantas y hongos de Colombia, incentivando la conexión entre empresas, comunidades locales y clientes. Finalmente, el cuarto esquema de trabajo se aplicará el marco de la VCN en tres áreas piloto biodiversas de Colombia, para mejorar la seguridad alimentaria, la salud, el rango dietético y la prosperidad de las comunidades locales.

Data published through GBIF: http://i2d.humboldt.org.co/resource?r=le_fungi_chocesboy_2021

Taxonomic coverage

General taxonomic coverage description: Del total de especies documentadas en las fichas, 80 especies pertenecen al filo Basidiomycota, con representantes de los órdenes Agaricales, Polyporales, Hymenochaetales, Boletales,  Russulales, Cantharellales y Geastrales (organizados de aucerdo a la importancia en su representatividad). Asimismo, 3 especies del filo Ascomycota  pertenecientes a los órdenes Hypocreales y Pezizales.
Taxonomic ranks
Family: Agaricaceae, Amanitaceae, Bolbitiaceae, Boletaceae, Boletinellaceae, Callistosporiaceae, Cantharellaceae, Cortinariaceae, Entolomataceae, Geastraceae, Hydnangiaceae, Hygrophoraceae, Hymenochaetaceae, Hymenogastraceae, Inocybaceae, Irpicaceae, Marasmiaceae, Meruliaceae, Mycenaceae, Omphalotaceae, Ophiocordycipitaceae, Physalacriaceae, Pleurotaceae, Polyporaceae, Psathyrellaceae, Russulaceae, Sarcoscyphaceae, Strophariaceae, Tricholomataceae

Spatial coverage

General spatial coverage: Lista de especies de hongos útiles y no útiles presentes en diferentes departamentos de Colombia. El listado incluye especies nativas y no nativas.
Coordinates: 4°9'36''S and 12°19'48''N Latitude; 78°57'0''W and 66°41'24''W Longitude 

Temporal coverage: July 19, 2021 - August 31, 2021

Methods

Method step description: Para la elaboración de las fichas de especies de hongos útiles y no útiles de Colombia se diligenció un archivo en formato Excel siguiendo una modificación del estándar de información biológica DarwinCore. El estándar fue ajustado para incluir nuevas variables y reconciliar los parámetros necesarios para la publicación de la información en el portal ColFungi administrado por el Real Jardín Botánico de KEW y el SIB Colombia. La búsqueda de literatura se realizó utilizando las bases de datos como Google, ScienceDirect, Dialnet, SciELO, Scopus y PubMed; se consultaron los repositorios de diferentes universidades del país en la consulta de literatura gris como son las tesis de Pregrado, Maestría y Doctorado y también se llevó a cabo la consulta de material bibliográfico en físico como libros y/o capítulos de libros no disponibles en línea. Se documentó información sobre la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de las especies. 

La revisión de categorías taxonómicas, sinonimias y autoría de los nombres científicos se siguió de acuerdo al Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp), que es un recurso comunitario actualmente coordinado y respaldado por el Real Jardín Botánico de Kew y representado por la Sección de Micología, el Landcare Research-NZ, representada por el Grupo de Micología, y el Instituto de Microbiología de la Academia China de Ciencias, actuando como los custodios. La información de las categorías de uso y modo de uso, así como la abundancia, ecosistema al cual está asociada la especie, el conocimiento de compuestos activos, su aprovechamiento, la capacidad de producción y los productos derivados de la especie se consultaron en información bibliográfica disponible como artículos de investigación, revisión, tesis de pregrado, maestría y doctorado, libros o capítulos de libros, páginas web, entre otras fuentes de información consultadas. Algunos datos de distribución fueron tomados del Servicio de Información sobre Diversidad Biológica Mundial (GBIF) disponible en https://www.gbif.org/. El estado de conservación de las especies fue consultado en la Iniciativa Global de Lista Roja de Hongos (http://iucn.ekoo.se/iucn/species_list/#tab-species-list-thumbs-assessment-published) y en la Lista Roja de la UICN (https://www.iucnredlist.org/search/list?query=fungi&searchType=species). En archivo en formato Excel y de gestor bibliográfico se relacionaron las referencias consultadas.
Study extent description: Información sobre hongos útiles y no útiles reportadas en diversas Localidades, municipios y departamentos de Colombia.
Sampling description: Para la elaboración de las fichas de especies de hongos útiles y no útiles de Colombia se diligenció un archivo en formato Excel siguiendo una modificación del estándar de información biológica DarwinCore. El estándar fue ajustado para incluir nuevas variables y reconciliar los parámetros necesarios para la publicación de la información en el portal ColFungi administrado por el Real Jardín Botánico de KEW y el SIB Colombia. La búsqueda de literatura se realizó utilizando las bases de datos como Google, ScienceDirect, Dialnet, SciELO, Scopus y PubMed; se consultaron los repositorios de diferentes universidades del país en la consulta de literatura gris como son las tesis de Pregrado, Maestría y Doctorado y también se llevó a cabo la consulta de material bibliográfico en físico como libros y/o capítulos de libros no disponibles en línea. Se documentó información sobre la ecología, nombres comunes, taxonomía, distribución geográfica, hábitat, morfología y uso de las especies. En archivo en formato Excel y de gestor bibliográfico se relacionaron las referencias consultadas.
Quality control description: La revisión de categorías taxonómicas, sinonimias y autoría de los nombres científicos se siguió de acuerdo al Index Fungorum (http://www.indexfungorum.org/names/Names.asp), que es un recurso comunitario actualmente coordinado y respaldado por el Real Jardín Botánico de Kew y representado por la Sección de Micología, el Landcare Research-NZ, representada por el Grupo de Micología, y el Instituto de Microbiología de la Academia China de Ciencias, actuando como los custodios. La información de las categorías de uso y modo de uso, así como la abundancia, ecosistema al cual está asociada la especie, el conocimiento de compuestos activos, su aprovechamiento, la capacidad de producción y los productos derivados de la especie se consultaron en información bibliográfica disponible como artículos de investigación, revisión, tesis de pregrado, maestría y doctorado, libros o capítulos de libros, páginas web, entre otras fuentes de información consultadas. Algunos datos de distribución fueron tomados del Servicio de Información sobre Diversidad Biológica Mundial (GBIF) disponible en https://www.gbif.org/. El estado de conservación de las especies fue consultado en la Iniciativa Global de Lista Roja de Hongos (http://iucn.ekoo.se/iucn/species_list/#tab-species-list-thumbs-assessment-published) y en la Lista Roja de la UICN (https://www.iucnredlist.org/search/list?query=fungi&searchType=species).

Datasets

Dataset description
Object name: Darwin Core Archive Lista de especies de Macromicetos útiles y no útiles de Colombia
Character encoding: UTF-8
Format name: Darwin Core Archive format
Format version: 1.0
Distribution: http://i2d.humboldt.org.co/archive.do?r=le_fungi_chocesboy_2021
Publication date of data: 2024-11-27
Language: Spanish
Licences of use: Libre a nivel interno y externo (Creative Commons Attribution Non Commercial (CC-BY-NC) 4.0)

Metadata language: Spanish
Date of metadata creation: 2021-09-06
Hierarchy level: Dataset

References
Albino Smania, E. D. F. A., Delle Monache, F., Yunes, R. A., Paulert, R., & Smania, A. (2007). Antimicrobial activity of methyl australate from Ganoderma australe. Revista Brasileira de Farmacognosia, 17(1), 14–16.  https://doi.org/10.1590/S0102-695X2007000100004 05
Arboleda, C., Mejía, A. I., Franco-Molano, A. E., Jiménez, G. A., & Penninckx, M. J. (2008). Autochthonous white rot fungi from the tropical forest of Colombia for dye decolourisation and ligninolytic enzymes production. Sydowia, 60(2), 165–180. 07
Bautista-Gonzalez, J.A., Moreno-Fuentes, A. (2014). Los hongos medicinales de México. Pp: 145–176. En: Moreno-Fuentes A, Garibay-Orijel R (eds). La Etnomicología en México. Estado del Arte-Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (CONACyT). México D. F.: Universidad Autonoma del Estado de Hidalgo- Instituto de Biología (UNAM)-Sociedad Mexicana de Micología-Asociación Etnobiológica Mexicana-Grupo Interdisciplinario para el desarrollo de la Etnomicología en México-Sociedad Latinoamericana de Etnobiología. 13
Boa, E. (2004). Wild edible fungi: A global overview of their use and importance to people. Non-wood forest products 17. Roma, Italia: FAO.  149 p. 14
Bolaños, A.C., Soto Medina, E. (2011) Macrohongos Comestibles y Medicinales Comunes en la Vegetación de la Universidad del Valle, Colombia. Revista de Ciencias, 15, 31–38. https://doi.org/10.25100/rc.v15i0.515 15
Calonge, F. D., Mata, M., & Umaña, L. (2007). Macrocybe titans, un hongo espectacular presente en Costa Rica, América Central. Bull. Famm., N. S., 32, 21–24. 18
Carreño-Ruiz, S. D., Cappello-García, S., Gaitán-Hernández, R., Cifuentes-Blanco, J., & Rosique-Gil, E. (2014). Growth of three tropical edible fungi in culture mediums and agricultural waste. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 5(8), 1447–1458. 20
Franco-Molano, A. E., Vasco-Palacios, A.M., López-Quintero, C.A., & Boekhout, T. (2005) Macrohongos de la región del Medio Caquetá - Colombia: guía de campo. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquia. 211 p. 30
Garibay-Orijel, R., & Ruan-Soto, F. (2014). Listado de los Hongos silvestres consumidos como alimento tradicional en México. En A. Moreno-Fuentes & R. Garibay-Orijel (Eds.), La Etnomicología en México. Estado del Arte. (pp. 91-109). Red de Etnoecología y Patrimonio Biocultural (CONACyT). Universidad Autonoma del Estado de Hidalgo. Instituto de Biología (UNAM). Sociedad Mexicana de Micología. Asociación Etnobiológica Mexicana. Grupo Interdisciplinario para el desarrollo de la Etnomicología. 32
Guzmán, G., & Varela, L. (1978). Los Hongos de Colombia III. Observaciones sobre los hongos, líquenes y mixomicetos de Colombia. Caldasia, 12(58), 309-338. 36
Guzmán, G., Torres, M. G, Ramirez-Guillén, F., Ríos-Hurtado, A. (2004). Introducción al conocimiento de los Macromicetos del Chocó, Colombia. Revista Mexicana de Micología,19, 33-43. 37
Milhorini, S. da S., Smiderle, F. R., Biscaia, S. M. P., Rosado, F. R., Trindade, E. S., & Iacomini, M. (2018). Fucogalactan from the giant mushroom Macrocybe titans inhibits melanoma cells migration. Carbohydrate Polymers, 190(February), 50–56. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2018.02.063 58
Palacio, M., Gutiérrez, Y., Franco-Molano, A.E., & Callejas-Posada, R. (2015). Nuevos registros de macrohongos (Basidiomycota) para Colombia procedentes de un bosque seco tropical. Actualidades Biológicas, 37 (102), 319–339 70
Peña-Cañón, E. R., & Henao-Mejía, L. G. (2014) Conocimiento y uso tradicional de hongos silvestres de las comunidades campesinas asociadas a bosques de roble (Quercus humboldtii) en la zona de influencia de la Laguna de Fúquene, Andes Nororientales. Etnobiología, 12, 28–40. 73
Pulido, M. M. (1983). Estudios en Agaricales Colombianos. Los hongos de Colombia IX. (P. Ruiz Carranza & S. Díaz Piedrahita (eds.)). Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional. 79
Sanjuan, T. (1999). La diversidad del género Cordyceps en hormigas del bosque húmedo tropical de Colombia. [Tesis de grado]. Universidad Nacional de Colombia. 89
Stijve, T. (2004). The tropical giant mushroom Macrocybe titans is edible and can be cultivated. Antwerpse Mycologische Kring. AMK Mededelingen 3: 93–94. 98
The Global Fungal Red List Initiative (2020). Disponible en: http://iucn.ekoo.se/en/iucn/welcome. Consultado en 08 Junio 2021 100
Vasco-Palacios, A. M. (2002). Estudio etnobiológico de los hongos macromicetes entre los Uitoto de la region de Araracuara (Amazonía Colombiana). [Tesis de Pregrado]. Universidad Nacional de Colombia. 105
Vasco-Palacios, A. M., Suaza, S. C., Castaño-Betancur, M., & Franco-Molano, A. E. (2008). Conocimiento etnoecólogico de los hongos entre los indígenas Uitoto, Muinane y Andoke de la Amazonía Colombiana. Acta Amazonica, 38(1), 17–28.  https://doi.org/10.1590/S0044-59672008000100004 106
Vasco-Palacios, A., & Franco-Molano, A. (2013). Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota-Basidiomycota). Mycotaxon, 121(1), 100–158. 107
Wisniewski, A. C. (2009). Produção de Amilase e Glucoamilase por Macrocybe titans Cultivado em resíduos sólidos agroindustriais. [Tesis de Maestría no publicada]. Universidade Regioal de Blumeau. 113
Wisniewski, A. C., Lopes De Almeida, M. Â., Palma, M. B., & Tavares, L. B. B. (2010). Produção de enzimas amilolíticas por Macrocybe titans em resíduo do processamento de cerveja. Revista Brasileira de Biociências, 8(3), 285–293. 114
Zent, E. L., Zent, S., & Iturriaga, T. (2004). Knowledge and use of fungi by a mycophilic society of the Venezuelan Amazon. Economic Botany, 58(2), 214–226. https://doi.org/10.1663/0013-0001(2004)058[0214:KAUOFB]2.0.CO;2 122
Zhang, J. J., Dong, Y., Qin, F.Y., Cheng, Y. (2019). Australeols A−F, neuroprotective meroterpenoids from Ganoderma australe. Fitoterapia 134, 250-255. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2019.02.021. 123
Franco-Molano, A. E., Aldana, R., & Halling, R. (2000) Setas de Colombia. Guía de campo. Medellín, Colombia: Universidad de Antioquía. 156 p. 127
Franco-Molano, A.E., Corrales, A., & Vasco-Palacios, A. M. (2010) Macrohongos de Colombia II. Listado de especies de los ordenes Agaricales, Boletalles, Cantharelalles y Russulales (Agaricomycetes, Basidiocmycota). Actualidades Biológicas, 32, 89–113 128
García Lemos, A., & Bolaños Rojas, A. C. (2011). Macrohongos presentes en el bosque seco tropical de la región del Valle del Cauca, Colombia. Revista de Ciencias, 14, 45–54. https://doi.org/10.25100/rc.v14i0.653 129
Jiménez-Zárate, J., Garibay-Orijel, R., Yahia, E. M., Esquivel-Naranjo, E. U., Arellano-Carbajal, F., & Landeros, F. (2020). Primer registro de la comestibilidad de Phillipsia domingensis Berk. (Pezizales: Ascomycota): aspectos nutricionales y actividad biológica. Scientia Fungorum, 50, e1254. https://doi.org/10.33885/sf.2020.50.1254 133
Lombana-Álvarez, P., Monterroza-Álvarez, J. A., Chamorro-Quiroz, L. F., Franco-Molano, A. E., & Payares-Díaz, I. R. (2016). Nuevos registros de macromicetos para Colombia. Actual Biol, 38(105), 181-189. https://doi.org/10.17533/udea.acbi.v38n105a05 135
Soto-Medina E., & Bolaño Rojas, A. (2013). Hongos macroscópicos en un bosque de niebla intervenido, vereda Chicoral, Valle del Cauca, Colombia. Biota Colombiana, 14 (2), 1-12. 137
Vasco-Palacios, A. M. (2006). Acervo etnomicológico en la región del medio Caquetá. Concepción y uso de los hongos por los indígenas Muinane, Andoke y uitoto. [Tesis de Maestría]. Universidad de Antioquia, Medellín. 143 p. 141
Singer, R. (1963). OAK MYCORRHIZA FUNGI IN COLOMBIAV. Mycopathol. et Mycol. Appl., 20, 239-252. 143
Montoya, A. F., Arias, D. F., & Betancur Agudelo, M. (2005). Contribución al conocimiento de los hongos macromicetos del resguardo indigena nuestra señora de la candelaria de la montaña Riosucio - Caldas. Boletín Científico (Centro de Museos) Museo de Historia Natural, 9, 19-30. 144
Betancur Agudelo, M., Calderón H., M., Betancourt G., Ó., & Sucerquia Gallego, Á. (2007). Hongos Macromycetes en dos relictos de Bosque Húmedo Tropical Montano Bajo de la vereda La Cuchilla, Marmato, Caldas. Boletín Científico - Centro de Museos - Museo de Historia Natural, 11(enero-diciembre), 19-31. 145
Peña-Venegas, C. P., & Vasco-Palacios, A. M. (2019). Endo- and Ectomycorrhizas in Tropical Ecosystems of Colombia. En M. C. Pagano & M. A. Lugo (Eds.), Mycorrhizal Fungi in South America (Fungal Bio, pp. 111-146). Springer Nature. https://doi.org/https://doi.org/10.1007/978-3-030-15228-4_6 145
Sanjuan, T. I., Franco-molano, A. E., Kepler, R. M., Spatafora, J. W., Tabima, J., Vasco-Palacios, A. M., & Restrepo, S. (2015). Five new species of entomopathogenic fungi from the Amazon and evolution of neotropical Ophiocordyceps. Fungal Biology, 119(10), 901-916. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2015.06.010.This 147
Vasco-Palacios, A. M., López-Quintero, C., Franco-Molano, A. E., & Boekhout, T. (2014). Austroboletus amazonicus sp. nov. and Fistulinella campinaranae var. scrobiculata, two commonly occurring boletes from a forest dominated by Pseudomonotes tropenbosii (Dipterocarpaceae) in Colombian Amazonia. Mycologia, 106(5), 1004-1014. https://doi.org/10.3852/13-324 148
Wartchow, F., & Maia, L. C. (2007). The Neotropical Amanita crebresulcata Bas : new citation from Northeast Brazil. Hoehnea, 34(2), 131-134. 149
Vargas, N., Pardo-de La Hoz, C. J., Danies, G., Franco-Molano, A. E., Jiménez, P., Restrepo, S., & Grajales, A. (2017). Defining the phylogenetic position of Amanita species from Andean Colombia. Mycologia, 109(2), 261-276. https://doi.org/10.1080/00275514.2017.1309631 150
Castiblanco-Z., A., Pinzón-O., C. A., & Pinzón-O., J. (2017). Primer Registro de Hydnopolyporus fimbriatus (Cooke) D. A. Reid (Polyporales: Meripilaceae) para el departamento de Cundinamarca, Colombia. Bol. Cient. Mus. Hist. Nat. U. de Caldas, 21(2), 30-37. https://doi.org/10.17151/bccm.2017.21.2.2 151
Putzke, J., Henao-Mejía, L. G., Peña-Cañón, R., Niño-Fernández, Y., & Chivatá-Bedoya, T. (2020). New citations to the agaricobiota (Fungi-Basidiomycota) in oak forests of the Northeastern Andes of Colombia. Hoehnea, 47(e422019), 2-9. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1590/2236-8906-42/2019 152
Kittakoop, P., Punya, J., Kongsaeree, P., Lertwerawat, Y., Jintasirikul, A., Tanticharoen, M., & Thebtaranonth, Y. (1999). Bioactive naphthoquinones from Cordyceps unilateralis. Phytochemistry, 52, 453-457. 153
Vargas, N., & Restrepo, S. (2020). A Checklist of Ectomycorrhizal Mushrooms Associated with Quercus humboldtii in Colombia. En J. Pérez-Moreno, A. Guerin-Laguette, R. Flores Arzú, F.-Q. Yu, & Mushrooms (Eds.), Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World: Perspectives from Ecological, Agricultural and Social Sciences (pp. 425-450). Springer Nature. https://doi.org/https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8 154
Pinzón-Osorio, C. A., & Pinzón-Osorio, J. (2016). Primer reporte de Entoloma hochstetteri (Entolomataceae, Agaricales, Basidiomycota) para el departamento de Santander, Colombia. Rev. Biodivers. Neotrop., 6(2), 126-130. https://doi.org/10.18636/bioneotropical.v6i2.181 155
Vasco-Palacios, A. M., Franco-Molano, E., López-Quintero, C. A., & Boekhout, T. (2005). Macromycetes (Ascomycota, Basidiomycota) de la región del medio Caquetá, departamentos de Caquetá y Amazonas (Colombia). Biota Colombiana, 6(1), 127–140. 156
Vasco-Palacios, A. M. (2016). Ectomycorrhizal fungi in Amazonian tropical forests in Colombia. Fundación Biodiversa Colombia. 205 p. 157
Franco-Molano, A. E., Corrales, A., & Vasco-Palacios, A. M. (2010). Macrohongos de Colombia II. Listado de especies de Los órdenes Agaricales, Boletales, Cantharellales y Russulales (Agaricomycetes, Basidiomycota). Actual Biol, 32(92), 89-114. 158
Singer, R. (1974). A Monograph of Favolaschia (First Edit). Verlag Von J. Cramer. 108 p. 159
Vargas, N., & Restrepo, S. (2019). Macrohongos (Basidiomycota y Ascomycota) de los ecosistemas exocársticos de El Peñón (Andes), Santander, Colombia. En C. A. Lasso, J. C. Barriga, & J. Fernández-Auderset (Eds.), Biodiversidad subterránea y epigea de los sistemas cársticos de El Peñón (Andes), Santander, Colombia. Serie Editorial Fauna Silvestre Neotropical. (Volumen VII, pp. 315-353). Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 160
Vasco-Palacios, A. M., Zuluaga, M., Benjumea, C., Corrales, A., Niño Fernandez, Y. M., Peña- Cañón, R., & Vargas-Estupiñan, N. (2020). Gloiocephala quercetorum (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020, e.T174799623A179542965. https://doi.org10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T174799623A179542965 161
Hydnopolyporus fimbriatus (Cooke) D.A.Reid in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset. https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-12. 162
López R., A., & García A., J. (2011). Hydnopolyporus fimbriatus. Funga Veracruzana, 125(Mayo), 1-4. 163
Hygroaster nodulisporus (Dennis) Singer in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-12. 164
Sato, H., Ohta, R., & Murakami, N. (2020). Molecular prospecting for cryptic species of the Hypholoma fasciculare complex : toward the effective and practical delimitation of cryptic macrofungal species. Scientific Reports, 10(13224), 1-13. https://doi.org/10.1038/s41598-020-70166-z 165
Peña-Cañón, E. R. (2021). Producto 3: “Proyecto de Plantas y hongos útiles” Informe de la salida de campo al municipio de Otanche (Boyacá). Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt. 18 p. 166
Campi, M., Mancuello, C., Maubet, Y., & Niveiro, N. (2017). Laccaria fraterna (Cooke & Mass .: Sacc.) Pegler, 1965 (Agaricales , Basidiomycota) associated with exotic Eucalyptus sp . in northern Argentina and Paraguay. Check List, 13(4), 87-90. https://doi.org/https://doi.org/10.15560/13.4.87 167
Laccaria fraterna (Sacc.) Pegler in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-12. 168
Rosero-Lasprilla. L., Peña-Cañón, E. R., & Niño Fernandez, Y. M. (2021). Registro de plantas y hongos en el marco del proyecto: Valoración de servicios ecosistémicos a partir de componentes esenciales para la biodiversidad Norandina en Boyacá. v1.0. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Dataset/Occurrence. https://doi.org/10.15472/nobfla 169
Leiotrametes menziesii (Berk.) Welti & Courtec. in GBIF Secretariat. (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset. accessed via GBIF.org on. 170
De Boer, W., Folman, L. B., Klein Gunnewiek, P. J. A., Svensson, T., Bastviken, D., Öberg, G., Del Rio, J. C., & Boddy, L. (2010). Mechanism of antibacterial activity of the white- rot fungus Hypholoma fasciculare colonizing wood. Can. J. Microbiol., 56, 380-388. https://doi.org/10.1139/W10-023 171
Anithachristy, S. A., Arunmani, M., & Sitther, V. (2014). Rock Phosphate Solubilization using Oxalic Acid - secreting Laccaria fraterna. Indian Journal of Bioinformatics and Biotechnology, 3(1), 16–21. http://ijbb.informaticspublishing.com/index.php/ijbb/article/view/46207 172
Welti, S., Moreau, P., Favel, A., Courtecuisse, R., Haon, M., Navarro, D., Taussac, S., & Lesage-Meessen, L. (2012). Molecular phylogeny of Trametes and related genera, and description of a new genus Leiotrametes. Fungal Diversity, 55, 47-64. https://doi.org/10.1007/s13225-011-0149-2 173
Yaling, L., Pongnak, W., & Kasem, S. (2014). Mushroom and macrofungi collection for screening bioactivity of some species to inhibit coffee antharcnose caused by Colletotrichum coffeanum. Journal of Agricultural Technology, 10(4), 845-861. 174
Capello-García, S., Rosique Gíl, E., & Cifuentes-Blanco, J. (2013). Guia de hongos macroscópicos del Parque Estatal Agua Blanca (F. Morales Hoil (Ed.); Primera Ed). Universidad Juárez Autónoma de Tabasco. 175
Putzke, J.(2014). Cogumelos no Sul do Brasil. Vol 1. Casa das Letras Editora. 100 p. 176
Vargas, N., Bernal, A., Sarria, V., Franco-Molano, A., & Restrepo, S. (2011). Amatoxin and phallotoxin composition in species of the genus Amanita in Colombia: A taxonomic perspective. Toxicon, 58(6-7), 583-590. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2011.09.005 177
MyCoPortal (2021). Mycology Collections data Portal. Recuperado de: http://mycoportal.org/portal/index.php. Consultado en 20 de  Agosto 2021. 178
Vargas-Estupiñan, N., Calle, A., Drechsler-Santos, E.R., Kossmann, T., da Cunha, K.M., Sandoval-Leiva, P., Torres, D. & Vasco-Palacios, A.M. 2020. Amanita fuligineodisca (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020: e.T172678109A179541167. https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T172678109A179541167.en 179
Vasco-Palacios, A. M., Hernandez, J., Peñuela-Mora, M. C., Franco-Molano, A. E., & Boekhout, T. (2018). Ectomycorrhizal fungi diversity in a white sand forest in western Amazonia. Fungal Ecology, 31, 9-18. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2017.10.003 180
Tavassoli, M., Afshari, A., Arsene, A. L., Mégarbane, B., Dumanov, J., Bastos Paoliello, M. M., Tsatsakis, A., Carvalho, F., Hashemzaei, M., Karimi, G., & Rezaee, R. (2019). Toxicological profile of Amanita virosa – A narrative review. Toxicology Reports, 6, 143-150. https://doi.org/10.1016/j.toxrep.2019.01.002 181
Wartchow, F., Cortez, V. G., & Cavalcanti Q., M. A. (2015). Studies on Amanita (Amanitaceae) in Brazil: the discovery of A. aureofloccosa in the Brazil. Revista Brasileira de Botanica, 38(3), 639-643. https://doi.org/10.1007/s40415-015-0161-y 182
Dijk, H. van, Onguene, N. A., & Kuyper, T. W. (2003). Knowledge and utilization of edible mushrooms by local populations of the rain forest of South Cameroon. AMBIO: A Journal of the Human Environment, 32(1), 19-23.  https://doi.org/10.1579/0044-7447-32.1.19 183
Vasco-Palacios, A.M., Calle, A., Drechsler-Santos, E.R., Kossmann, T., da Cunha, K.M. & TEHO Group. 2020. Austroboletus amazonicus (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020: e.T75098759A179542191. https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T75098759A179542191.en  184
Yaseen, T., Khan, M., Shakeel, M., & Ara, H. (2016). Morphological study of edible and non- edible mushrooms , district Swabi, Khyber Pakhtunkhwa, Pakistan. Pure and Applied Biology, 5(4), 889-894.  https://doi.org/http://dx.doi.org/10.19045/bspab.2016.50112 185
Hadibarata, T., & Yuniarto, A. (2020). Biodegradation of polycyclic aromatic hydrocarbons by high - laccase basidiomycetes fungi isolated from tropical forest of Borneo. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 28(101717), 1-8. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101717 186
Collybia nivea (Mont.) Dennis in GBIF Secretariat (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2021-08-17. 187
Wannathes N., Desjardin D.E., Retnowati A., Tan Y.S., Lumyong S. 2004. A redescription of Marasmius pellucidus, a species widespread in South Asia. Fungal Diversity, 17: 203-218. 188
Ryvarden, L., & Johansen, I. 1980. A preliminary polypore flora of East Africa. Oslo: Fungiflora. p. 636. 189
Zhuk, T. S., Skorobohatko, O. S., Albuquerque,  W., & Zorn. H. (2021). Scope and limitations of biocatalytic carbonyl reduction with white-rot fungi. Bioorganic Chemistry, (108). https://doi.org/10.1016/j.bioorg.2021.104651 190
Vasco-Palacios, A. M., Lucio-Robledo, G., & Ryvarden, L. (2016). Synopsis of Coltricia and Coltriciella in the Neotropics, new species from Amazonian ecosystems in Colombia. En A. Vasco-Palacios (Ed.), Ectomycorrhizal fungi in Amazonian tropical forests in Colombia (pp. 124-141). Fundación Biodiversa Colombia. 191
Tedersoo, L., Suvi, T., Beaver, K., Saar, I., (2007). Ectomycorrhizas of Coltricia and Coltriciella (Hymenochaetales, Basidiomycete) on Caesalpiniaceae, Dipterocarpaceae and Myrtaceae in Seychelles. Mycological progress, 6, 101–107. 192
Flores-Arzú, R. (2020). Diversity and importance of edible ectomycorrhizal fungi in Guatemala. En: Pérez-Moreno, J., Guerin-Laguette, A., Flores Arzú, R., & Yu, F.-Q. (Eds.).  Mushrooms, Humans and Nature in a Changing World. Springer, Cham. https://doi.org/10.1007/978-3-030-37378-8_4 196
Singer, R. (1976). Flora Neotropica. Monograph No. 17. Marasmieae (Basidiomycetes-Tricholomatceae). The New York Botanicla Garden. 197
Ruan-Soto, F., Cifuentes, J., Pérez-Ramírez, L., Ordaz-Velázquez, M., & Caballero, J. (2021). Hongos macroscópicos de interés cultural en los Altos de Chiapas y la selva Lacandona, México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 92, e923525. https://doi.org/10.22201/ib.20078706e.2021.92.3525 198
Pegler, D. N. (1983). Agaric flora of the Lesser Antilles. Kew bulletin additional series IX. Royal Botanic Gardens, Kew. 668 p. 199
Santana, V. F. (2015). Potencial antibacteriano de Agaricomycetes coletados no Nordeste do Brasil. [Universidade Federal de Pernambuco]. https://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/25283 200
Ohtsuka, S., Ueno, S., Yoshikumi, C., Hirose, F., Ohmura, Y., Wada, T., Fujii, T., & Takahashi, E. (2006). Polysaccharides having an anticarcinogenic effect and a method of producing them from species of Basidiomycetes UK Patent. 201
Aldana-Gómez, Ruth & Ana E. Franco-Molano. (2001). A new species of Gloiocephala from Colombia. Mycotaxon 80: 447-452. 202
Sierra-Toro, J.D., González, J.A. & Sáenz, M.S. 2011.  Registro preliminar de macrohongos (Ascomycetes y Basidiomycetes) en el bosque húmedo montano del alto el romeral (municipio de Angelópolis, departamento de Antioquia-Colombia). Revista Facultad Nacional de Agronomía 64(2): 6159-6174. 203
Adhikari, M. K. (2014). Addition and correction to the knowledge on edibility of wild mushrooms in Nepal: a discussion. En Bulletin of Department of Plant Resources (Vol. 36, pp. 1-15). Department of Plant Resources. 204
Sum, W. C., Indieka, S. A., & Matasyoh, J. C. (2019). Antimicrobial activity of Basidiomycetes fungi isolated from a Kenyan tropical forest. African Journal of Biotechnology, 18(5), 112-123. https://doi.org/10.5897/AJB2018.16660 205
Nicholas, G. M. (1998). Australasian fungi: a natural product study. [Tesis de Doctorado]. Departamento de Química, University of Canterbury. 193 p. 206
Ullah, M. A., Camacho, R., Evans, C. S., & Hedger, J. N. (2002). Production of Ligninolytic Enzymes by Species Assemblages of Tropical Higher Fungi from Ecuador. En R. Watling, J. C. Frankland, A. M. Ainsworth, S. Isaac, & C. H. Robinson (Eds.), Tropical mycology: Volume 1 Macromycetes (pp. 101-112). CAB International. https://doi.org/10.1079/9780851995427.0131 208
López, A., & García A., J. (2012). Favolaschia cinnabarina. Funga Veracruzana, 135(September), 1-6. 209
Gillen, K., Læssøe, T., Kirschner, R., & Piepenbring, M. (2013). Favolaschia species (Agaricales , Basidiomycota) from Ecuador and Panama. Nova Hedwigia, 96(1-2), 117-165. https://doi.org/10.1127/0029-5035/2012/0070 210
Puccinelli, C., & Capelari, M. (2009). Marasmius (Basidiomycota - Marasmiaceae) do Parque Estadual das Fontes do Ipiranga, São Paulo, SP, Brasil: l: seção Sicci. Hoehnea, 36(4), 637-655. 211
Retnowati, A. (2018). The species of Marasmiellus (Agaricales: Omphalotaceae) from Java and Bali. Gardens’ Bulletin Singapore, 70(1), 191-258. https://doi.org/10.26492/gbs70(1).2018-17 212
Rother Somenzi, M., & Borges da Silveira, R. M. (2009). Leucocoprinus Pat . (Agaricaceae , Basidiomycota ) no Parque Estadual de Itapuã , Viamão, R, Brasil. Acta bot. bras., 23(3), 720-728. 213
Corrales, A., Sanchez Tello, J. D., Benjumea, C., Peña-Cañón, R., Sanjuan, T., Vargas- Estupiñan, N., & Vasco-Palacios, A. M. (2020). Leccinum andinum (amended version of 2020 assessment). The IUCN Red List of Threatened Species 2020, e.T174799474A179539177. https://doi.org/https://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2020-3.RLTS.T174799474A179539177.en 214
Serrano Añazco, Y. D. L. (2016). Diversidad de hongos entomopatógenos del género Cordyceps s.l. (Hypocreales: Clavicipitaceae) en el Ecuador. [Pontificia Universidad Católica del Ecuador]. http://repositorio.puce.edu.ec/handle/22000/11022 216
Valenzuela, R., Raymundo, T., Decock, C., & Esqueda, M. (2012). Aphyllophoroid fungi from Sonora, México 2. New records from Sierra de Álamos-Río Cuchujaqui Biosphere Reserve. Mycotaxon, 122, 51-59.  https://doi.org/10.5248/122.51 217
Milenge Kamalebo, H., & De Kesel, A. (2020). Wild edible ectomycorrhizal fungi: An underutilized food resource from the rainforests of Tshopo province (Democratic Republic of the Congo). Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine, 16(8), 1-13.  https://doi.org/10.1186/s13002-020-0357-5 218
Evans, H. C., Araújo, J. P. M., Halfeld, V. R., & Hughes, D. P. (2018). Epitypification and re-description of the zombie-ant fungus, Ophiocordyceps unilateralis (Ophiocordycipitaceae). Fungal Systematics and Evolution, 1(June), 13-22. https://doi.org/10.3114/fuse.2018.01.02 219
Smith, A.H.; Singer, R. 1964. A monograph of the genus Galerina Earle. New York: Hafner Publishing Co. 384 p. 220
Ruan-Soto, J. F., Pérez-Ramírez, L., Cifuentes, J., Ordaz Velázquez, M., Cruz Solís, A., García del Valle, Y., Reyes Escutia, F. de J., & Mariaca Méndez, R. (2017). Hongos de los lacandones de Naha y Metzabok: guía ilustrada de macromicetos (Primera Ed). Red temática de Patrimonio Biocultural CONACYT-ECOSUR-CONANP-Sociedad Mexicana de Micología-GIDEM A.C. http://patrimoniobiocultural.com/archivos/publicaciones/libros/GUIA ILUSTRADA DE MACROMICETOS.pdf 222
Kuhar, F., Castiglia, V., & Papinutti, L. (2012). Geastrum species of the la Rioja province, Argentina. Mycotaxon, 122, 145-156.  https://doi.org/10.5248/122.145 223
Souza, H. Q., & Aguiar, I. (2004). Diversidade de Agaricales (Basidiomycota) na Reserva Biológica Walter Egler, Amazonas, Brasil. Acta Amazonica, 34(1), 43-51. https://doi.org/10.1590/s0044-59672004000100006 225
Rout, Y., Behera, F., Kumar, S., Sahoo, M. P., & Devi, R. S. (2020). Mushroom Diversity of Dhenkanal District, Odisha, India: Source of Alternative Foods and Medicines. European Journal of Medicinal Plants, 31(7), 33-41. https://doi.org/10.9734/EJMP/2020/v31i730252 226
Sanjuan, T., Amat, G., & Heano, L. G. (2001). Anamorfos y cepas del hongo entomopatógeno Cordyces en hormigas del bosque húmedo tropical del piedemonte putumayense. Revista Colombiana de Entomología, 27(1-2), 79-86. 227
Phlebopus beniensis (Singer & Digilio) Heinem. & Rammeloo in GBIF Secretariat. (2021). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset . accessed via GBIF.org. on 2021-08-24. 228
Ameri, A., Vaidya, J. G., & Deokule, S. S. (2011). In vitro evaluation of anti-staphylococcal activity of Ganoderma lucidum , Ganoderma praelongum and Ganoderma resinaceum from Pune, India. African Journal of Microbiology Research, 5(3), 328-333. https://doi.org/10.5897/AJMR11.070 229
Tanruean, K., Chandet, N., & Rakariyatham, N. (2013). Bioconversion of Ferulic Acid into High Value Metabolites by White Rot Fungi Isolated from Fruiting-Body of the Polypore Mushroom. Journal of Medical and Bioengineering, 2(3), 168-172. https://doi.org/10.12720/jomb.2.3.168-172 230
Arana-Cuenca, A., Roda, A., Téllez, A., Loera, O., Carbajo, J. M., Terrón, M. C., & González, A. E. (2004). Comparative analysis of laccase-isozymes patterns of several related Polyporaceae species under different culture conditions. Journal of Basic Microbiology, 44(2), 79-87. https://doi.org/10.1002/jobm.200310324 231
Ramesh, C., & Pattar, M. G. (2010). Antimicrobial properties, antioxidant activity and bioactive compounds from six wild edible mushrooms of western ghats of Karnataka, India. Pharmacognosy Research, 2(2), 107-112. https://doi.org/10.4103/0974-8490.62953 232
Jiménez Ruiz, M., Pérez-Moreno, J., Almaraz-Suárez, J. J., & Torres-Aquino, M. (2013). Hongos silvestres con potencial nutricional, medicinal y biotecnológico comercializados en Valles Centrales, Oaxaca. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 4(2), 199-213. 233
Daou, M., Farfan Soto, C., Majira, A., Cézard, L., Cottyn, B., Pion, F., Navarro, D., Oliveira Correia, L., Drula, E., Record, E., Raouche, S., Baumberger, S., & Faulds, C. B. (2021). Fungal treatment for the valorization of technical soda lignin. Journal of Fungi, 7(39), 1-21. https://doi.org/10.3390/jof7010039 234
Peng, X.-R., Liu, J.-Q., Han, Z.-H., Yuan, X.-X., Luo, H.-R., & Qiu, M.-H. (2013). Protective effects of triterpenoids from Ganoderma resinaceum on H2O2-induced toxicity in HepG2 cells. Food Chemistry, 141(2), 920-926. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.03.071 235
Sarikurkcu, C., Yildiz, D., Akata, I., & Tepe, B. (2021). Evaluation of the metal concentrations of wild mushroom species with their health risk assessments. Environmental Science and Pollution Research, 28, 21437-21454. https://doi.org/10.1007/s11356-020-11685-0 236
Rosa, L. H., Machado Gomes, K. M., Jacob, C. C., Capelari, M., Rosa, C. A., & Zani, C. L. (2003). Screening of Brazilian Basidiomycetes for Antimicrobial Activity. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 98(7), 967-974. 237
Alves, M. J., Ferreira, I. F. R., Dias, J., Teixeira, V., Martins, A., & Pintado, M. (2012). A review on antimicrobial activity of mushroom (Basidiomycetes) extracts and isolated compounds. En Planta Med (Vol. 78, Número 16, pp. 1707-1718). https://doi.org/10.1055/s-0032-1315370 238
Contato-Graça, A., Brugnari, T., Ames Sibin, A. P., dos Reis Buzzo, A. J., Babeto de Sá-Nakanishi, A., Bracht, L., Bersani-Amado, C. A., Peralta, R. M., & Marques de Souza, C. G. (2020). Biochemical Properties and Effects on Mitochondrial Respiration of Aqueous Extracts of Basidiomycete Mushrooms. Cell Biochemistry and Biophysics, 78, 111-119. https://doi.org/10.1007/s12013-020-00901-w 239
Khaund, P., & Joshi, S. R. (2013). Wild edible macrofungal species consumed by the Khasi tribe of Meghalaya, India. Indian Journal of Natural Products and Resources, 4(2), 197-204. 240
Khaund, P., & Joshi, S. R. (2014). Enzymatic Profiling of Wild Edible Mushrooms Consumed by the Ethnic Tribes of India. J Korean Soc Appl Biol Chem, 57(2), 263-271. https://doi.org/10.1007/s13765-013-4225-z 241
Gaire, S.-P., Zhou, X.-G., & Jo, Y.-K. (2021). Sterile White Basidiomycete Fungus Marasmius graminum: A New Pathogen causing Seedling Blight in Rice. Plant Disease, 105(3), 702. https://doi.org/10.1094/PDIS-05-20-1136-PDN 242
Ren, P., Wang, J., Miao, X., Zhu, W., Wu, Y., Li, Y., Gao, K., & Yang, Y. (2021). ( ± ) -Pabmaragramin, a scalemic meroterpenoid produced by Marasmius graminum via precursor-assisted biosynthesis. Tetrahedron Letters, 63(19), 152715.  https://doi.org/10.1016/j.tetlet.2020.152715 243
Aubrecht, G., Huber, W., & Weissenhofer, A. (2013). Coincidence or benefit ? The use of Marasmius (horse-hair fungus) filaments in bird nests. AVIAN BIOLOGY RESEARCH, 6(1), 26-31. https://doi.org/10.3184/175815512X13531739538638 244
Rosenberger, M. (2018). Atividade antimicrobiana de cogumelos (Agaricales) nativos da Floresta Estacional do oeste do Paraná [Universidade Federal do Paraná]. https://acervodigital.ufpr.br/handle/1884/56084 245
Freymann, B. P. (2007). Physical properties of fungal rhizomorphs of marasmioid basidiomycetes used as nesting material by birds. Ibis., 150(2), 395-399. https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1474-919X.2007.00750.x 246
Landinez-Torres, A., Panelli, S., Picco, A. M., Comandatore, F., Tosi, S., & Capelli, E. (2019). A meta-barcoding analysis of soil mycobiota of the upper Andean Colombian agro-environment. Scientific Reports, 9(10085), 1-12. https://doi.org/10.1038/s41598-019-46485-1 247