Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevados

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I2D-BIO_2015_IN015. En el complejo de páramos Los Nevados, ubicado en la cordillera central de los Andes Colombianos, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, en las vertientes oriental y occidental, se llevaron a cabo muestreos para el registro de información en campo de cinco grupos biológicos: plantas, aves, mamíferos, anfibios y edafofauna epigea (coleópteros y arañas). Esto con el fin de aportar información biológica fundamental para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque, como insumo para la delimitación de los páramos en Colombia a través del estudio de la diversidad biológica y su distribución. En un gradiente de elevación entre 3414 y 4026 m, se documentaron 13750 registros de datos con información biológica, 361 para 6 especies de anfibios, 3435 registros de artrópodos de 22 ordenes y 27 familias, 2356 registros para 100 especies de aves, 177 para 20 especies de mamíferos y 7421 para 326 especies y morfoespecies de plantas.

Resumen
Fecha de publicación May 16, 2017
Versión 4 (última)
Archivo Darwin Core descargar (482 KB ) 13750 registros
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Registro GBIF No registrado
Palabras Clave
metadatos; levantamietos de información; plantas; mamíferos; aves; anfibios; Caldas; Risaralda; Tolima; wcs.; Specimen; Occurrence
Idioma
Idioma de los metadatos Español
Idioma del recurso Español
Enlaces Externos
URL del recursohttp://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015
Estudios bióticos: Plantas, anfibios, mamíferos, aves y edafofauna epígea (coleópteros y arácnidos), en el complejo de páramo Los Nevadoshttp://doi.org/10.15472/rs81k8 UTF-8 txt
Contacto del Recurso
NombreOlga León Moya
PosiciónInvestigadora
OrganizaciónInstituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt
Dirección Calle 28A #15-09, Bogotá, D.C. Colombia, Bogotá, D.C., Bogotá, D.C., COLOMBIA
Contactooleon@humboldt.org Tel: (57) 1 320 2767 Ext. 1261
Página Webhttp://humboldt.org.co/
Creador del Recurso
NombreYadi Toro Marín
PosiciónInvestigador
OrganizaciónWCS
Dirección Calle 2 # 42-23, Cali, Valle del Cauca, COLOMBIA
Contactoytoro@wcs.org Tel: 3127908600
Página Webhttp://www.wcscolombia.org/
Proveedor de Metadatos
NombreYadi Toro Marín
PosiciónInvestigador
OrganizaciónWCS
Dirección Calle 2 # 42-23, Cali, Valle del Cauca, COLOMBIA
Contactoytoro@wcs.org Tel: 3127908600
Página Webhttp://www.wcscolombia.org/
Parte Asociada 1
Nombre Infraestructura Institucional de Datos
OrganizaciónInstituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander Von Humboldt
Dirección Calle 28A No. 15-09, Bogotá, D.C., Bogotá, D.C., COLOMBIA
Contactoi2d@humboldt.org.co Tel: 3202767
Página Webhttp://www.humboldt.org.co
Rol Custodio de los Datos
Parte Asociada 2
NombreYadi Toro
PosiciónInvestigador
OrganizaciónWCS
Dirección Calle 2 # 42-23, Cali, Valle del Cauca, COLOMBIA
Contactoytoro@wcs.org Tel: 3127908600
Página Webhttp://www.wcscolombia.org
Rol Proveedor de Contenido
Parte Asociada 3
NombreElizabeth Sánchez
PosiciónInvestigadora
OrganizaciónWCS
Dirección Calle 2 # 42-23, Cali, Valle del Cauca, COLOMBIA
Contactoelizabethsancheztoro@gmail.com Tel: 3147407875
Página Webhttp://www.wcscolombia.org
Rol Proveedor de Contenido
Parte Asociada 4
NombreAlejandra Hurtado
PosiciónInvestigadora
OrganizaciónWCS
Dirección Calle 2 # 42-23, Cali, Valle del Cauca, COLOMBIA
Contactoaleja8803@gmail.com
Rol Proveedor de Contenido
Cobertura Geográfica
DescripciónLos datos proceden de la cordillera central, complejo los nevados, municipios de Marulanda al Norte, Anzoátegui al Sur, Anzoátegui y Líbano al Este y Manizales y Villamaría al Oeste.
Coordenadas4.623, 5.25 / -75.493, -75.217 (Latitud mínima, máxima / Longitud mínima/máxima)
Cobertura Taxonómica
Descripción familia Actinidaceae
Especie Saurauia ursina

Descripción familia Adoxaceae
Especie Viburnum undulatum

Descripción familia Alstroemeriaceae
Especie Bomarea, Bomarea carderi, Bomarea hirsuta, Bomarea linifolia, Bomarea patinii, Bomarea pauciflora

Descripción familia Apiaceae
Especie Bowlesia, Eryngium sp., Eryngium humboldtii, Eryngium humile, Myrrhidendron pennelli

Descripción familia Apocynaceae
Especie Cynanchum

Descripción familia Aquifoliaceae
Especie Ilex myricoides

Descripción familia Araceae
Especie Anthurium oxybelium

Descripción familia Araliaceae
Género Hydrocotyle, Oreopanax, Schefflera
Especie Hydrocotyle humboldtii, Oreopanax discolor, Oreopanax glabrifolium, Oreopanax incisus, Oreopanax ruizianum, Oreopanax tolimanus

Descripción famiia Aspleniaceae
Género Asplenium
Especie Asplenium theciferum, Asplenium triphyllum

Descripción familia Asteraceae
Género Achyrocline, Ageratina, Asteraceae, Baccharis, Conyza, Diplostephium, Eupatorium, Gynoxys, Hieracium, Hypochaeris, Jungia, Munnozia, Pentacalia, Taraxacum, Verbesina
Especie Achyrocline satureioides, Aequatorium jamesonii, Aequatorium polygonoides, Aequatorium tatamanum, Ageratina glyptophlebia, Ageratina tinifolia, Baccharis buxifolia, Baccharis caldasiana, Baccharis genistelloides, Baccharis latifolia, Baccharis prunifolia, Baccharis rupicola, Baccharis tricuneata, Baccharis vacciniifolia, Bidens andicola, Diplostephium alveolatum, Diplostephium micradenium, Diplostephium revolutum, Diplostephium schultzii, Diplostephium tolimense, Diplostephium violaceum, Espeletia hartwegiana, Gamochaeta americana, Gynoxys buxifolia, Gynoxys lehmannii, Gynoxys pendula, Gynoxys tolimensis, Hieracium avilae, Hipochaeris radicata, Mutisia clematis, Oritrophium peruvianum, Pentacalia vaccinioides, Pentacalia andicola, Pentacalia sylvicola, Pentacalia vaccinioides, Senecio formosus, Senecio repens, Taraxacum campylodes, Taraxacum officinale, Werneria pygmaea, Xenophyllum crassum

Descripción Balanophoraceae
Especie Corynaea sphaerica

Descripción familia Begoniaceae
Género Begonia
Especie Begonia ferruginea, Begonia umbellata, Begonia urticae

Descripción familia Berberidaceae
Especie Berberis dumaniana, Berberis goudotii, Berberis quindiuensis

Descripción familia Blechnaceae
Género Blechnum
Especie Blechnum arborescens, Blechnum cordatum, Blechnum loxense

Descripción familia Brassicaceae
Especie Cardamine flexuosa

Descripción familia Bromeliaceae
Género Aechmaea, Bromelia, Greigia, Guzmania, Puya
Especie Greigia columbiana, Racinaea penlandii, Tillandsia complanata

Descripción familia Brunelliaceae
Especie Brunellia

Descripción familia Calceolariaceae 
Especie Calceolaria, Calceolaria fruticosa, Calceolaria microbefaria

Descripción familia Campanulaceae
Especie Centropogon ferrugineus, Centropogon hirsutus, Siphocampylus mirabilis

Descripción familia Caryophyllaceae
Género Cerastium
Especie Cerastium mollissimum, Cerastium subspicatum

Descripción familia Chloranthaceae
Género Hedyosmum
Especie Hedyosmum racemosum

Descripción familia Clethraceae
Género Clethra

Descripción familia Convolvulaceae
Género Convolvulaceae

Descripción familia Coriariaceae
Género Coriaria
Especie Coriaria ruscifolia

Descripción familia Cucurbitaceae
Género Cucurbitacea

Descripción familia Cunoniaceae
Género Weinmannia
Especie Weinmannia balbisiana, Weinmannia mariquitae, Weinmannia rollottii, Weinmannia tomentosa

Descripción familia Cyatheaceae
Género Cyathea

Descripción familia Cyperaceae
Género Oreobolus
Especie Carex bonplandii, Rhynchospora caucana, Swallenochloa tessellata

Descripción Dennstaedtiaceae
Especie Histiopteris incisa

Descripción famila Dryopteridaceae
Género Elaphoglossum
Especie Elaphoglossum engelii, Elaphoglossum funckii

Descripción Elaeocarpaceae
Especie Vallea stipularis

Descripción familia Equisetaceae
Género Equisetum
Especie Equisetum bogotense

Descripción familia Ericaceae
Género Gaultheria, Plutarchia
Especie Cavendishia bracteata, Disterigma acuminatum, Disterigma codonanthum, Disterigma empetrifolium, Gaultheria erecta, Gaultheria foliolosa, Macleania rupestris, Myrsine dependens, Pernettya prostrata, Plutarchia monantha, Themistoclesia mucronata, Vaccinium floribundum, Gaultheria anastomosans

Descripción familia Escalloniaceae
Especie Escallonia myrtilloides

Descripción Euphorbiaceae
Género Euphorbiaceae

Descripción Fabaceae
Especie Lupinus microphyllus, Lupinus alopecuroides

Descripción familia Gentianaceae
Especie Gentiana sedifolia

Descripción Geraniaceae
Especie Geranium sibbaldioides, Geranium diffusum

Descripción Grossulariaceae
Especie Ribes leptostachyum 

Descripción familia Gunneraceae
Especie Gunnera magellanica

Descripción familia Hymenophyllaceae
Especie Hymenophyllum elegantulum

Descripción familia Hypericaceae
Género Hypericum
Especie Hypericum juniperinum, Hypericum lancifolium, Hypericum lancioides, Hypericum laricifolium

Descripción Iridaceae
Especie Sisyrinchium convolutum, Xyris subulata

Descripción Isoetaceae
Especie Isoetes colombiana

Descripción familia Lamiaceae
Género Vitex
Especie Clinopodium brownei, Satureja nubigena

Descripción familia Loranthaceae
Especie Aetanthus nodosus, Gaiadendron punctatum, Loranthaceae, Tristerix longebracteatus

Descripción familia Lycopodiaceae
Género Huperzia
Especie Huperzia crassa, Huperzia hohenackeri, Lycopodiella cernua, Lycopodium clavatum

Descripción Malvaceae
Género Acaulimalva

Descripción familia Melastomataceae
Especie Axinaea, Axinaea colombiana, Brachyotum, Brachyotum lindenii, Brachyotum strigosum, Bucquetia glutinosa, Melastomataceae, Miconia, Miconia, Miconia bracteolata, Miconia chionophila, Miconia chlorocarpa, Miconia ferruginea, Miconia guianensis, Miconia jahnii, Miconia ligustrina, Miconia orcheotoma, Miconia salicifolia, Miconia tinifolia, Tibouchina grossa

Descripción familia Myrsinaceae
Género Ardisia, Myrsine
Especie Myrsine coriacea, Myrsine dependens

Descripción Nyctaginaceae
Especie Colignonia ovalifolia

Descripción familia Onagraceae
Género Fuchsia
Especie Fuchsia corollata, Fuchsia hartwegii, Fuchsia magellanica, Fuchsia petiolaris

Descripción familia Orchidaceae
Género Elleanthus, Lepanthes, Masdevallia, Pleurothallis, Stelis
Especie Cranichis diphylla, Cyrtochilum auropurpureum, Cyrtochilum pardinum, Elleanthus aurantiacus, Elleanthus graminifolius, Epidendrum, Epidendrum, Epidendrum megalospathum, Oncidium cultratum, Pachyphyllum crystallinum, Pleurothallis coriacardia, Telipogon alberti

Descripción familia Orobanchaceae
Especie Bartsia santolinifolia, Castilleja fissifolia, Clinopodium brownei

Descripción familia Oxalidaceae
Especie Oxalis integra

Descripción familia Passifloraceae
Especie Passiflora mixta

Descripción familia Piperaceae
Género Peperomia
Especie Peperomia verticillata

Descripción familia Plantaginaceae
Especie Plantago lanceolata, Plantago linearis, Plantago rigida

Descripción familia Poaceae
Género Aegopogon, Aulonemia, Cortaderia
Especie Agrostis breviculmis, Agrostis foliata, Anthoxanthum odoratum, Bromus lanatus, Calamagrostis effusa, Calamagrostis intermedia, Chusquea scandens, Cortaderia columbiana, Cortaderia nitida, Holcus lanatus, Swallenochloa tessellata

Descripción familia Polygalaceae
Especie Monnina aestuans, Monnina involuta, Monnina revoluta

Descripción Polygonaceae
Género Polygonum
Especie Rumex acetosella

Descripción familia Polypodiaceae
Género Serpocaulon
Especie Campyloneurum angustifolium, Campyloneurum angustipaleatum, Melpomene assurgens, Pleopeltis macrocarpa, Polypodium monosorum

Descripción familia Primulaceae
Género Geissanthus
Especie Geissanthus serrulatus

Descripción familia Pteridaceae
Género Eriosorus, Jamesonia
Especie Jamesonia bogotensis, Jamesonia goudotii, Jamesonia pulchra

Descripción familia Ranunculaceae
Género Ranunculus
Especie Ranunculus peruvianus, Ranunculus praemorsus

Descripción familia Rosaceae
Género Acaena, Aphanes, Hesperomeles, Lachemilla, Prunus, Rubus
Especie Acaena elongata, Azorella multifida, Escallonia myrtilloides, Hesperomeles ferruginea, Hesperomeles heterophylla, Hesperomeles lanuginosa, Hesperomeles obtusifolium, Hesperomeles pernettyoides, Lachemilla aphanoides, Lachemilla fulvescens, Lachemilla nivalis, Lachemilla orbiculata, Polylepis sericea, Rubus compactus, Rubus glaucus, Rubus guyanensis

Descripción familia Rubiaceae
Especie Nertera granadensis, Galium hypocarpium

Descripción familia Santalaceae
Especie Dendrophthora clavata, Corynaea sphaerica

Descripción familia Scrophulariaceae
Especie Bartsia santolinifolia, Buddleja bullata, Buddleja incana

Descripción familia Smilacaceae
Género Smilax

Descripción familia Solanaceae
Género Cestrum, Sessea, Solanum
Especie Saracha quitensis, Sessea crassivenosa, Solanum caripense, Solanum laurifolium

Descripción familia Symplocaceae
Género Symplocos

Descripción familia Tropaeolaceae
Especie Tropaeolum tuberosum

Descripción Urticaceae
Género Pilea

Descripción Winteraceae
Especie Drimys granadensis

Descripción familia Woodsiaceae
Especie Cystopteris fragilis

Descripción Xyridaceae
Especie Xyris subulata

Descripción clase Amphibia, orden Anura, familia bufonidae
Especie Osornophryne percrassa

Descripción clase Amphibia, orden Anura, familia Craugastoridae
Especie Pristimantis leptolophus, Pristimantis peraticus, Pristimantis racemus, Pristimantis simoterus, Pristimantis uranobates

Descripción Clase aves, familia Scolopacidae
Especie Gallinago nobilis, Gallinago jamesoni

Descripción Clase aves, familia Emberizidae
Especie Atlapetes pallidinucha

Descripción Clase aves, familia Thraupidae
Especie Anisognathus igniventris, Tangara vassorii

Descripción Clase aves, familia Trochilidae
Especie Metallura tyrianthina, Aglaeactis cupripennis

Descripción Clase aves, familia Troglodytidae
Especie Cistothorus platensis

Descripción Clase mamiferos, familia Caenolestidae
Especie Caenolestes fuliginosus

Descripción Clase mamiferos, familia Cricetidae
Especie Akodon affinis, Microryzomys, Microryzomys minutus, Thomasomys, Thomasomys aureus, Thomasomys cinereiventer, Thomasomys laniger, Thomasomys niveipes

Descripción Clase mamiferos, familia Leporidae
Especie Sylvilagus brasiliensis

Descripción Clase mamiferos, familia Phyllostomidae
Género Anoura
Especie Anoura geoffroyi, Sturnira bidens, Sturnira bidens, Sturnira erythromos

Descripción Clase mamiferos, familia Soricidae
Especie Cryptotis thomasi

Descripción Clase mamiferos, familia Vespertilionidae
Género Myotis
Especie Eptesicus andinus, Histiotus montanus, Lasiurus blossevillii

Descripción clase Arachnida, familia Araeae
Familia Amaurobiidae, Anapidae, Anyphaenidae, Araneus, Caponiidae, Corinnidae, Dipluridae, Gnaphosidae, Linyphiidae, Lycosidae, Lygromma, Mimetidae, Ochyrocera, Ochyroceratidae, Ocrepeira, Oonopidae, Palpimanidae, Paratropididae, Philodromidae, Pholcidae, Pisauridae, Pomboa, Salticidae, Tetragnathidae, Theridiidae, Zodariidae

Descripción Clase insecta, orden Coleoptera
Familia Cantharidae, Carabidae, Carabidae, Chrysomelidae, Chrysomelidae, Coccinellidae, Curculionidae, Dermestidae, Elateridae, Erotylidae, Histeridae, Latridiidae, Lycidae, Lycidae, Meloidae, Nitidulidae, Phengodidae, Ptiliidae, Ptilodactylidae, Pyrochroidae, Scarabaeidae, Scirtidae, Silphidae, Staphylinidae, Tenebrionidae
Cobertura Temporal
Fecha inicial / Fecha final2014-03-01 / 2014-12-04
Datos del Proyecto
TítuloFondo Adaptación_Insumos para la Delimitación de Ecosistemas Estratégicos: Páramos y Humedales
(Personal) Nombre Yadi Toro Marín
(Personal) Rol Proveedor de Contenido
Fuentes de financiaciónConvenio de Cooperación No. 13-13-014-360CE entre IAvH y WCS
Descripción del área de estudioEl estudio se llevó a cabo en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en el complejo de páramos Los Nevados, en los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima, entre los meses de Marzo y julio de 2014.
Descripción del proyectoEl objetivo principal consistía en elaborar estudios bióticos en jurisdicción de las corporaciones CARDER, CORPOCALDAS y CORTOLIMA, orientado a aportar información biológica para la identificación de la franja de transición Páramo-Bosque en Colombia, específicamente en el complejo de páramos Los Nevados, a través del estudio de la diversidad y distribución de aves, anfibios, pequeños mamíferos, plantas y edafofauna epigea (arañas y coleópteros). Esta información biológica es un insumo importante para establecer la franja de transición Bosque-Páramo, aporte fundamental para lograr la la delimitación de los páramos en Colombia.
Métodos de Muestreo
Área de estudioEl área de estudio se ubicó en el complejo de páramos Los Nevados, en bosques andinos y páramos de la cordillera Central, en jurisdicción de los departamentos de Caldas, Risaralda y Tolima. La fase de registro de información en campo se llevó a cabo entre los meses de marzo y julio de 2014. En Caldas se realizaron muestreos en el municipio de Manizales, Marulanda y Villamaría. En Manizales, la localidad particular del muestreo fue la vereda El Desquite, finca Martinica, Reserva Forestal Protectora Río Blanco, entre 3453 y 3973m. en Marulanda, el estudio se realizó en la Vereda El Páramo, sector El Vergel, entre 3414 y 3730m. En Villamaría, el área de estudio se ubicó en la Vereda El Pindo, sector Playa Larga, entre 3430 y 4023m. En Risaralda, se muestreó en el municipio de Santa Rosa de Cabal, en la Vereda La Linda, Sector Cortaderal, Hacienda La Sierra entre 3620 y 3986m. En Tolima, se llevaron a cabo muestreos en los municipios de Anzoátegui, Herveo, Ibagué, Murillo y Santa Isabel. En Anzoátegui, la localidad de estudio fue el Corregimiento Juntas, Vereda El Vergel, Hacienda Diostán,entre 3503 y 3847m. En Herveo, el área de estudio se ubicó en el sector de Letras, Finca La Romelia, entre 3508 y 3898m. En Ibagué, el muestreo se realizó en la vereda La Primavera, entre 3607 y 3901m. En Murillo, el área de estudio fue el Corregimiento El Bosque, Vereda La Cabaña, Finca El Recreo, entre 3480 y 4005m. En Santa Isabel, el área se ubicó en la vereda Totarito, Finca El Águila, entre 3557 y 3960m.
Descripción del muestreoEl registro de los datos biológicos se llevó a cabo siguiendo las propuestas metodológicas de los componentes de vegetación y fauna para los estudios bióticos, para la identificación y delimitación de los complejos de páramos a escala 1:25.000, elaborado por el Instituto Alexander von Humboldt (2013). Se establecieron cuatro transectos en el departamento de Caldas, uno en el departamento de Risaralda y cinco en el departamento del Tolima, en los siguientes municipios: Manizales, Marulanda, Villamaría, Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui, Murillo, Herveo, Ibagué y Santa Isabel. Los muestreos de vertebrados se llevaron a cabo en las localidades de la Reserva Forestal Protectora Río Blanco, en Manizales, en Santa Rosa de Cabal, Anzoátegui y Murillo. Para plantas y artrópodos epigeos los muestreos se realizaron en todos los transectos. En cada una de las estaciones dispuestas a lo largo de los transectos altitudinales se emplearon: redes de niebla y puntos de conteo para aves; redes de niebla y trampas de caída para pequeños mamíferos; transectos de muestreo de banda fija y caminatas aleatorias para anfibios, trampas de caída y captura directa para artrópodos epigeos y parcelas para el estudio de plantas.
Control de calidadEn la caracterización de cada grupo se emplearon métodos estandarizados siguiendo protocolos suministrados por el IAvH. Se contó con la retroalimentación de los investigadores que participaron en los muestreos, también con el acompañamiento y asesoría por parte de profesionales calificados de WCS y del Instituto Alexander von Humboldt. Para todos los grupos, la información recopilada se almacenó en hojas de cálculo elaboradas en Excel y en las plantillas para la base de datos de I2D, posteriormente se enviaron bases de datos, muestras biológicas e informes al Instituto Alexander von Humboldt.
Metodología paso a paso 1Mamíferos Para la captura de pequeños mamíferos no voladores (pequeños roedores, musarañas y zarigüeyas) se utilizaron 40 trampas plegables tipo Sherman dispuestas en un transecto lineal y ubicadas a nivel del suelo, separadas 10 m entre sí, en hojarasca, matorrales, grietas, interior del bosque y caminaderos. Como cebo atrayente se usó una mezcla de avena, maní, mantequilla y esencias de banano, con revisión y recambio cada 24 horas, por un período de tres días. Para la captura de murciélagos se utilizaron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (ojo de malla de 16 mm), siguiendo las recomendaciones de Patterson et al. (2006), Simmons & Voss (1998) y Tirira (1998). El esfuerzo de muestreo fue de cinco horas por estación; las redes se mantuvieron abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas, con revisión cada 30 minutos. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total, longitud de la cola, longitud de la pata, longitud de la oreja, longitud antebrazo y adicionalmente longitud de trago y longitud de la hoja nasal en murciélagos. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
Metodología paso a paso 2Aves: se emplearon dos métodos: detección visual y captura con redes. Como método de detección se utilizó el conteo por puntos de banda fija, ubicando seis puntos de conteo en cada estación, con 50 m de radio, separados de 100 a 150 m entre sí. En cada punto de conteo se realizaron 15 minutos de observación, con réplica al día siguiente, con un esfuerzo de muestreo de 24 horas por transecto .En cada estación se dispusieron ocho redes de niebla de 12 x 2.5 m (captura) en dos grupos de cuatro redes, separados aproximadamente 100 m entre sí. Las redes estuvieron expuestas desde las 5:30 a las 10:30 horas y desde las 16:00 a las 18:30 horas. Para cada individuo capturado se registró la fecha y hora de captura, especie, sexo, condición reproductiva y morfometría: masa corporal (peso), longitud total y longitud del culmen expuesto, longitud total del ala, envergadura, distancia entre plumas primarias y secundarias, longitud y graduación de la cola, altura y ancho del pico entre comisuras, longitud del tarso y longitud del hallux. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
Metodología paso a paso 3Plantas: En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo. En cada transecto altitudinal se establecieron tres parcelas de vegetación por estación de muestreo. El área de las parcelas varió así: en coberturas con dosel continuo parcelas de 100 m2, en coberturas con dosel discontinuo o ausente se levantaron parcelas de 50 m2. En el bosque altoandino y arbustales de páramo se tomaron los siguientes datos para las morfoespecies con un diámetro basal ≥ 2 cm a 30 cm del suelo: altura total, altura a la primera ramificación (para árboles), diámetro del tallo a 30 cm de altura, cobertura de copa, hábito (árbol, arbusto, roseta, hierba, epífita, etc.) y estado fenológico. Las áreas basales se calcularon a partir del diámetro de cada ramificación registrada (Villarreal et al.2006). La cobertura de copa se calculó a partir de las medidas de los diámetros mayor y menor, tomando como referencia el área proyectada de la copa de cada individuo sobre el suelo, En los herbazales, para el caso de macollas y otras especies cuya individualización fue difícil, se registraron las siguientes variables: altura total, cobertura de copa, porcentaje de cobertura, hábito y estado fenológico. Para cada estación de muestreo se elaboraron perfiles verticales de la vegetación registrada en el transecto con base en los levantamientos florísticos realizados; para ello se ubicó un punto de coordenada (x, y). Las muestras colectadas fueron secadas y procesadas en el Herbario CUVC de la Universidad del Valle, posteriormente fueron enviadas a la colección FMB del Instituto Alexander von Humboldt.
Metodología paso a paso 4Artrópodos (coleópteros y arañas): En cada transecto se definieron entre cinco y siete estaciones de muestreo, desde el límite superior al inferior. En cada estación se dispusieron dos transectos de 40 m, distanciados 50 m entre sí. En cada transecto se instalaron cinco trampas de caída. (separadas 10 m), elaboradas con recipientes plásticos de 10 cm de diámetro y medio litro de capacidad, enterrados ras del suelo; a cada trampa se adicionó una mezcla de 300 ml de agua y una gota de jabón (Villarreal et al. 2006). Se realizó captura manual durante una hora diaria en sustratos como la hojarasca, piedras, troncos, necromasa de frailejones y en la vegetación. Las muestras se almacenaron en bolsas de cierre hermético y se etiquetaron con un código referenciando la localidad, estación, transecto, número de trampa y fecha de captura. Posteriormente, los especímenes colectados se depositaron en frascos plásticos con etanol al 80% y se enviaron a colecciones biológicas del Instituto Alexander von Humboldt.
Metodología paso a paso 5Anfibios: En la Reserva Forestal Protectora Río Blanco y Anzoátegui, se usaron recorridos en transectos de banda fija a lo largo de la franja altitudinal en cada una de las estaciones. El uso de caminatas aleatorias se empleó en Santa Rosa de Cabal y Murillo. En los transectos de banda fija, se establecieron en cada estación seis transectos longitudinales de 100 x 2 m, separados por una distancia mínima de 50 m entre sí. el recorrido en cada estación se realizó en distancias no mayores a 270 metros. En ambos casos se realizaron caminatas diurnas y nocturnas, haciendo búsqueda visual y exploraciones en todos los microhábitats. Se usó una herramienta de labranza para remover y buscar especímenes en necromasa de frailejones y puyas. Se tomaron datos morfométricos como: peso, longitud rostro cloaca, ancho de la cabeza, ancho de la boca, longitud del antebrazo, longitud de la tibia, longitud del fémur, longitud del pie, grosor de la piel del dorso, coloración, uso de hábitat y sexo. Para la toma de estos datos se usaron pesolas de 30, 100 y 300 gr, también se usaron calibradores manuales.
Referencias
Identificador de la citación para este recurso http://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015
Cómo citar este recurso Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (2015). Estudios bióticos: Plantas, edafofauna epígea, anfibios y aves en los complejo de páramo Los Nevados. 13750 registros, aportados por: León, O. (Contacto del recurso), Toro-Marin, Y. (Creador del recurso, Proveedor de metadatos). Versión 3.0. http://i2d.humboldt.org.co/ceiba/resource.do?r=rrbb_nevados_faunaflora_2015
Referencia Garnier, E. et al. 2007. Assessing the effects of land-use change on plant traits, communities and ecosystem functioning in grasslands: A standardized methodology and lessons from an application to 11 european sites. Annals of Botany 99: 967-985.
Referencia Flórez, D. E. & H. Sánchez (1995) La diversidad de los arácnidos en Colombia. Aproximación inicial pp: 327-372 En: Rangel O. (ed) Colombia, Diversidad Biótica I., Instituto de Ciencias Naturales, Inderena, FES.
Referencia Frost, D. R. 2014. Amphibian Species of the World: an Online Reference. Version 6.0. American Museum of Natural History, New York, USA. Disponible en: http://research.amnh.org/herpetology/amphibia/index.html(Acceso: Septiembre 2014).
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Datos de la Colección
Nombre de la colecciónHerbario Federico Meden Bogotá, Colección de anfibios, entomológica y mamíferos del Instituto Alexander von Humboldt, Universidad ICESI, Universidad del Valle
Identificador de la colecciónFMB, IAvH-Am, IAvH-E, IAvH-M, ICESI, CUVC
Identificador de la colección parentaln/a
Método de preservación de los especímenes Alcohol
Metadatos Adicionales
Nivel de jerarquíadataset
PropósitoAunar esfuerzos técnicos, científicos, administrativos y financieros con el fin de elaborar los estudios bióticos a escala 1: 25000 del Complejo de Páramos Los Nevados en jurisdicción de CORPOCALDAS, CARDER y CORTOLIMA, para identificar la franja de transición páramo-bosque en el Complejo de Páramos “Los Nevados”.
Información asociada y/o adicionalEl presente recurso tiene información restringida temporalmente. Asociado a este recurso existen conjuntos de datos de rasgos y tejidos.